單克隆抗體的生產已經發展出高度成熟的平臺化純化工藝。其關鍵是蛋白質A親和層析。蛋白質A能高特異性、高親和力地結合大多數IgG的Fc區域,使得從細胞培養上清液中一步捕獲抗體達到極高的純度(>95%)。隨后,為了去除殘留的宿主細胞蛋白、DNA、聚合體、浸出的蛋白質A以及可能的內病毒,通常會跟進一個或多個“精純”步驟。典型的平臺工藝是:Protein A親和層析 -> 低pH滅活/病毒滅活 -> 陰離子交換層析(流穿模式,去除酸性雜質和DNA) -> 陽離子交換層析(結合-洗脫模式,精細去除聚合體和堿性雜質)。這個三步層析平臺被業界較廣采用,因其穩健、高效且易于進行工藝驗證。蛋白分離純化技術是推動生物技術產業發展的重要動力。抗體純化

在現代自動化純化系統中,集成多種在線檢測器可以實時監控純化進程。除了基本的紫外檢測器,還包括在線電導率儀監測鹽濃度、在線pH計監測酸堿度,甚至在線光散射和DLS檢測器,能夠實時判斷樣品單分散性和檢測聚集體形成,為過程控制和決策提供即時數據支持。純化后的蛋白質需要妥善儲存以維持其長期穩定性。關鍵考慮因素包括濃度(避免過稀)、緩沖液組成(添加穩定劑如甘油、氨基酸)、pH、溫度(常為-80°C分裝凍存)以及避免反復凍融。對于某些特別不穩定的蛋白質,可能需要添加特定的輔酶或底物類似物以穩定其構象。抗體純化離子交換色譜可根據蛋白表面的電荷差異分離蛋白。

鹽析法是蛋白粗提的經典技術,基于“鹽溶與鹽析”原理實現蛋白分離。蛋白質在低鹽濃度溶液中溶解度隨鹽濃度升高而增加(鹽溶),當鹽濃度達到一定閾值后,溶解度反而下降并析出(鹽析)。常用鹽類為硫酸銨,因其溶解度大、溫度系數小、對蛋白活性影響小且價格低廉。通過調節硫酸銨飽和度,可使不同蛋白依次析出,例如高飽和度硫酸銨可沉淀大分子球蛋白,低飽和度則沉淀小分子白蛋白。鹽析后需通過透析或脫鹽柱去除鹽分,避免影響后續純化步驟。
除非純化的是胞外分泌的蛋白質,否則第一步通常是從細胞或組織中釋放出目標蛋白。細胞破碎的方法需根據樣本類型選擇。對于細菌,常用超聲破碎、高壓勻質(如French Press)或酶解法(如溶菌酶處理)。對于培養的哺乳動物細胞,通常采用溫和的 detergent 裂解液或Dounce勻漿器。植物組織更堅韌,可能需要液氮研磨或專門的酶解方案。破碎后,樣品立即變為復雜的漿液,包含細胞膜碎片、細胞器、核酸和所有可溶性蛋白質。此時,必須進行預處理,通常通過差速離心,先低速去除未破碎的細胞和大的碎片,再高速離心(如10,000-100,000 x g)獲得含有可溶性蛋白質的上清液(胞質組分)或沉淀(膜組分)。對于膜蛋白,還需加入去垢劑使其增溶。蛋白分離純化可用于研究蛋白質的相互作用機制。

細胞破碎是釋放目標蛋白的物理或化學手段。機械法中的高壓勻質利用細胞懸浮液在高壓下通過狹窄閥隙,因剪切力和空化效應導致細胞破裂,處理量大、效率高,適用于大規模制備。超聲破碎則利用高頻聲波產生微小氣泡破裂的空化作用粉碎細胞,適用于小體積樣本,但需注意產熱問題。非機械法包括酶溶法(使用溶菌酶、纖維素酶等特異性降解細胞壁)、滲透沖擊法(通過滲透壓劇烈變化使細胞脹破)以及去垢劑裂解法(溶解細胞膜脂質雙分子層)。選擇時需權衡破碎效率、目標蛋白穩定性、后續純化步驟及規模。通過優化工藝參數,可顯著提高蛋白分離純化的成功率。山東膜蛋白分離純化技術
色譜技術是一種高效的蛋白分離純化方法。抗體純化
在大腸桿菌等系統中表達重組蛋白時,一個常見的問題是目標蛋白可能以不溶性的、無活性的聚集體的形式表達,稱為“包涵體”。雖然這帶來了挑戰,但包涵體通常很純凈,且能抵抗蛋白酶降解。純化包涵體蛋白的策略與可溶性蛋白截然不同。首先需要通過超聲破碎細胞,然后通過離心收集包涵體沉淀,并用溫和的去垢劑(如Triton X-100)洗滌以去除附著雜質。關鍵的一步是“變性與復性”:使用高濃度的變性劑(如6-8 M鹽酸胍或尿素)溶解包涵體,使蛋白質去折疊為線性狀態。然后,通過緩慢地去除變性劑(如透析或稀釋),使蛋白質重新折疊恢復其天然構象和活性。復性過程復雜且效率低下,是包涵體蛋白純化的主要瓶頸。抗體純化
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