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來源: 發布時間:2025-09-09

外泌體作為藥物載體由于特殊的結構和循環方式,外泌體作為藥物運輸的載體具有獨特的優勢。例如外泌體的尺寸分布能夠增強滲透滯留效應,從而有選擇性地深入組織;其外層磷脂雙分子層可以保護內容物不受各種生物酶的影響,維持各種生物分子的活性;外泌體普遍存在于各種體液和組織中,其體積小,結構、組成與細胞膜類似,導致外泌體可以在避開免疫系統監督的同時深入組織內部,有較好的生物相容性;當采用內源外泌體時,能明顯降低其他藥物載體可能引起的有害免疫反應;除此之外,某些細胞來源或經特殊修飾過的外泌體具有良好的特異性,可以與特定的或組織結合。因此,載藥成為外泌體研究的一個重要分支,具有良好的應用前景。在外泌體中引入藥物的方式包括體內裝載和體外裝載兩種。體內藥物裝載可以通過傳統方法(如病毒轉染、脂質體轉染或電穿孔等)轉染來源細胞,編碼感興趣的RNA或蛋白質,也可以使藥物與來源細胞共混,使細胞分泌產生含有目標生物分子的外泌體。體外藥物裝載則首先需要得到純化的外泌體,然后將感興趣的藥物通過電穿孔或脂質體轉染等方法裝入純化的外泌體。外泌體內可裝載的藥物包括小分子化學藥物、蛋白質和多肽、核酸藥物、天然產物等。通過不同分組之間的細胞對于劃痕區修復能力的不同,可以判斷各組細胞的遷移與修復能力的差別。湖南外包科研技術服務實驗

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1.首要原則:細胞不重要情況下立即丟棄,培養箱滅菌,所用培養基也都要丟棄,器械等重新滅菌或拆用新的。2.細菌污染一般都救不回來了,發現的時候培養基一般都很渾濁且細胞都死了3.污染且細胞很重要時:遇到念球菌污染,且細胞為基因改造細胞,非常重要。如231貼壁乳腺細胞,發現細胞周圍出現很小的串珠透亮圓點,非常像念球菌污染,此時細胞狀態尚可,且污染少。處理如下:用預熱或室溫PBS清洗3次,可適當振搖,將污染沖洗下來。隨后加入10-20%雙抗到培養瓶,置于37度培養箱1h,之后再用PBS清洗三遍,直至視野下無可見污染。此時細胞也被沖下大部分,因此此方法只適用在細胞貼壁強,狀態好,密度高時使用。之后每天再更換培養基,每次用PBS沖洗2遍。過幾天細胞狀態尚可時,消化離心時用500r,3min,去掉上清,重復3次。這個方法是根據文獻可利用念球菌和細胞體積重量差異實現分離。基本上這一步做完以后,污染就基本了,接下來就注意多觀察,勤換液就行。云南兔科研技術服務服務生物分子學的研究范圍非常廣,包括蛋白質、核酸、糖類、脂質等生物分子的結構、功能和相互作用等方面。

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用途基因功能研究、免/殺傷/增殖等、抗體活性篩選(細胞水平的結合和阻斷)、CAR分子的殺傷活性評價。材料與儀器(以慢pMSCV載體為例)包含目的基因和eGFP-Tag的pMSCV質粒、帶有eGFP-Tag的pMSCV空載質粒、GAG質粒、VSV質粒、Puromycin、Polybrene、Lipo3000、HEK293T細胞、opti-MEM、DMEM、FBS、雙抗、μm的濾膜、熒光顯微鏡等。步驟1、基因的構建1)根據目的基因mRNA編碼區設計引物,分別在引物兩端加入酶切位點EcoRI和BglII。2)從細胞中提取目的基因mRNA,然后逆轉錄成cDNA,然后從cDNA里面用引物把目的基因的CDS區擴增出來。PCR擴增出帶有酶切位點的目的基因編碼區序列,連接至pMD19-T載體后轉化至感受態DH5α,分別進行菌落PCR鑒定和酶切鑒定。3)使用EcoRI和BglII雙酶切下目的基因序列,電泳割膠回收純化,連接到pMSCV-eGFP載體。再次轉化到感受態DH5α,菌落PCR鑒定和酶切鑒定成功后,送至公司測序、鑒定。4)鑒定成功后,將質粒轉化至感受態DH5α中,并進行無內質粒抽提。GAG質粒和VSV質粒同樣可以轉化至感受態DH5α中,并進行無內質粒抽提。質粒抽提后冷凍于-20℃保存。2、慢包裝1)使用DMEM完全培養基培養6cm皿HEK293T至匯合度為70~80%。

如果實驗平臺的儀器需要提前預約,建議提前規劃好使用的時間。反復總結尋找答案在整個預實驗的過程中可能會出現很多問題。比如造模效果欠佳、灌胃操作不當、腹腔注射操作失誤、使用不當等引起動物死亡。每遇到問題都需要自己想辦法解決,可以從導師、師兄師姐、文獻、貼吧、視頻教程等找到答案。比如筆者曾遇到同樣的給,發現有的大鼠得很深,有的大鼠還活蹦亂跳,在反復嘗試調整濃度,給劑量,更換方式,后來才發現是動物體重秤的準度有問題,導致體重秤得不準。因此,需要自己反復琢磨到底是實驗過程中哪一個環節出現問題,逐一排除。也要求在每一個實驗步驟需要標準化,統一化,盡可能的排除干擾因素,這樣方便在遇到問題快的找到答案。同時,建議每日總結,大到動物死亡原因分析,小到灌胃操作耗時多長時間。建議反復總結出每天實驗的優缺點。做任何一個操作之前,建議提前腦海中反復模擬,準備好相關工具和試劑,避免臨用之際缺少的,影響實驗操作節奏和個人心情。筆者曾經灌胃操作的時候發現竟然忘帶了,只好重新回實驗室準備,那真叫一個郁悶。仔細記錄每日實驗過程無論是碩士還是博士,導師給我們上的堂課往往就是交代我們要詳細記好實驗記錄,只要是和實驗相關的。動物模型的表現與人類疾病可能存在差異,因此需要謹慎使用。

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RNA甲基化修飾(m6A)研究RNA甲基化修飾約占所有RNA修飾的60%以上,而N6-甲基腺嘌呤(N6-methyladenosine,m6A)是高等生物mRNA和lncRNAs上為普遍的修飾。目前發現microRNA,circRNA,rRNA,tRNA和snoRNA上都有發生m6A修飾。m6A修飾主要發生在RRACH序列中的腺嘌呤上,其功能由“編碼器(Writer)”、“消碼器(Eraser)”和“讀碼器(Reader)”決定[1]。“編碼器(Writer)”即甲基轉移酶,目前已知這個復合物的成分有METTL3,METTL14,WTAP和KIAA1429;而ALKBH5和FTO作為去甲基酶(消碼器)可逆轉甲基化;m6A由m6A結合蛋白識別,目前發現m6A結合蛋白(讀碼器)有YTH結構域蛋白(包括YTHDF1,YTHDF2,YTHDF3,YTHDC1和YTHDC2)和核不均一蛋白HNRNP家族(HNRNPA2B1和HNRNPC)。m6A酶系統METTL3是早先被鑒定為結合SAM的組件,其缺失引起小鼠胚胎干細胞、Hela細胞和HepG2細胞中m6Apeaks的減少。METTL3及其同源蛋白METTL14定位在富含剪切因子的細胞核內亞細胞器-核小斑(Nuclearspeckle)上,顯示m6A修飾可能和RNA的剪切加工相關。WTAP與METTL3–METTL14二聚體相互作用,并共定位于核小斑,影響甲基化效率,參與mRNA剪。而KIAA1429作為候選的甲基轉移酶復合體的新亞基。湖南外包科研技術服務實驗

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