免疫組化在在病理診斷中，隨著各種抗體新的用途不斷被發現及越來越多的新型抗體的出現，免疫組化在cancer診斷及鑒別診斷、分類、預后判斷等方面產生了重大的影響。由于免疫組化技術也存在一些局限性，因此，深入研究免疫組化原理和技術，并努力實現規范化的操作，才能充分發揮免疫組化在病理的診斷及鑒別診斷、判斷預后、指導臨床醫療中的作用。

觀察組織切片中抗原的數量及其在組織中的分布情況，對抗原進行定位、定性及定量的研究，稱為免疫組織化學，由于抗原與抗體特異性結合，因此通過免疫組化使標記抗體的顯色劑(酶、熒光素、同位素、金屬離子等等)顯色來確定組織細胞內抗原(多肽和蛋白質)。IHC所用標本主要為兩大類:組織標本和細胞標本，其中制作組織標本更常用、更基本的方法是石蠟切片。石蠟切片對于組織形態保存好，有利于各種染色對照觀察，而且能長期保存;石蠟切片中使用的甲醛固定劑對組織內抗原暴露有一定的影響，但可進行抗原修復，是免疫組化中優先選擇的組織標本制作方法。 英瀚斯生物，專業承接免疫組化等各類病理染色檢測！山西小鼠免疫組化推薦

免疫組化實驗流程介紹：

英瀚斯生物為您整理總結免疫組化詳細步驟：

1、SP三步法

1）石蠟切片，常規脫蠟至水。

2）0.3%或3%H2O2去離子水（無色液體）孵育10-30分鐘，以滅活內源性過氧化物酶活性。

3）蒸餾水沖洗，PBS浸泡5分鐘

4）候選步驟：采用抗原修復：微波（建議30分鐘內4次中火）、高壓、酶修復方法。自然冷卻，再用3分鐘×3次.

5）血清封閉：室溫15-30分鐘，盡可能與二抗來源一致。傾去，勿洗。

6）滴加適當比例稀釋的一抗，37℃孵育2~3小時或4℃過夜（比較好復溫）。PBS沖洗，3分鐘×5次。

7）滴加生物素標記的二抗，室溫或37℃孵育30分鐘-1h。

8）PBS沖洗，3分鐘×5次。

9）滴加SP（鏈霉親和素-過氧化物酶），室溫或37℃孵育30分鐘-1h。

10）PBS沖洗，3分鐘×5次。

11）顯色劑顯色（DAB等）。

12）自來水充分沖洗。

13）可進行復染，脫水，透明。

14）選擇適當的封片劑封片。 陜西細胞免疫組化要多久免疫組化公司哪家好？

免疫組化分類中免疫酶標方法，英瀚斯生物為您介紹。免疫酶標方法是繼免疫熒光后，于60年代發展起來的技術。基本原理是先以酶標記的抗體與組織或細胞作用，然后加入酶的底物，生成有色的不溶性產物或具有一定電子密度的顆粒，通過光鏡或電鏡，對細胞表面和細胞內的各種抗原成分進行定位研究。免疫酶標技術是目前定位準確、對比度好、染色標本可長期保存，適合于光、電鏡研究等。免疫酶標方法的發展非常迅速，已經衍生出了多種標記方法，目前在病理診斷中廣為使用的當屬***法（過氧化物酶-抗過氧化物酶）、ABC法（卵白素-生物素-過氧化物酶復合物）、SP法（鏈霉菌抗生物素蛋白-過氧化物酶）、即用型二步法（聚合物鏈接）等。

免疫組化應該選擇石蠟切片還是冰凍切片？ 

（1）要求做冰凍切片的不一定能做石蠟切片，這是***我向一老師請教得出的結論。因為作石蠟切片時要高溫烤片，可能會破壞組織的抗原性，如果組織的抗原性較穩定，則可作石蠟切片；但是要求做石蠟切片的，可作冰凍切片。

（2）冰凍切片的優點是能夠較好的保存組織的抗原免疫活性，做免疫組化時不需抗原修復這一步。缺點是細胞內易形成冰晶而破壞細胞結構，可能會使抗原彌散；切片厚度較石蠟的厚，做的片子沒石蠟的漂亮。當你買一抗時，目錄上都寫著做什么樣的切片，如果它寫著只能做冰凍，就不能做石蠟，如寫著兩者都可，那就都能做。

（3）石蠟切片的優點可以保持組織細胞的形態結構，且容易存放在室溫，而冰凍切片比較麻煩，一定要存在-80度的低溫冰箱中，尤其是用來做原位雜交的的切片，為了防止RNA降解，保存一貫很重要。由于石蠟切片可以切到4微米左右，所以原位雜交探針容易滲透到組織中去，容易成功，而且得到的顏色/形態都較冰凍切片好。

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免疫組化染色呈陰性結果的原因有哪些？

1、抗體濃度和質量問題以及抗體來源選擇錯誤。不是抗體濃度越高就越易出現陽性結果，抗原抗體反應有前帶和后帶效應，必須摸索比較好濃度。

2、抗原修復不全，對于甲醛固定的組織必須用充分抗原修復來打開抗原表位，以利于與抗體結合；建議微波修復用高火4次*6min試試。有人做過實驗，這是比較好的時間和次數。若不行，還可高壓修復。

3、組織切片本身這種抗原含量低。

4、血清封閉時間過長。

5、DAB孵育時間過短。

6、細胞通透不全，抗體未能充分進入胞內參與反應。

7、開始做免疫組化，建議一定要首先做個陽性對照片，排除抗體等問題。 免疫組化如何得到好的效果？黑龍江病理免疫組化怎么選擇

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病理醫師日常工作中經常說的一句話應該就是“做個免疫組化吧”；不管是臨床醫師，還是患者，他們問的多的問題則是“為什么要做免疫組化？”病理醫師通過“特殊染色”來進行細胞的識別。這一做法的依據是特定細胞和組織中的成分不同、則化學性質不同，通過染色的方法則可以呈現不同顏色。不過，由于組織固定或儲存等，會造成相應物質的活性降低甚至消失，因而限制了特殊染色方法的應用。隨著免疫學研究的進展，根據抗原與相應抗體間特異性結合的性質，則有了現在免疫組化的方法：不同細胞、不同組織中抗原有一定差異，抗體與被測組織中的特定抗原結合，進而通過一定顯色方法將結合的抗體顯示出來。如有相應顯色，則證實可能有被測抗原；無顯色則可能無被測抗原。當然，這一方法中需注意相應的“例外”，如抗體的非特異性結合、非特異性顯色，則容易造成“假陽性”；或者雖有相關抗原、但所用抗體與該抗原并未結合等，則容易造成“假陰性”。隨著免疫組化的應用經驗的增加，這些問題在常規應用中盡量得以避免，前者如各種顯色方法的優化；后者如抗原修復方法的優化、新型抗體開發及選擇。山西小鼠免疫組化推薦

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