尺寸排阻層析,也稱為凝膠過濾,是根據蛋白質流體力學體積(或表觀分子量)進行分離的獨特方法。其固定相是由高度多孔的惰性顆粒組成。當蛋白質混合物通過層析柱時,大于孔徑的蛋白質無法進入顆粒內部,只能從顆粒間的空隙流過,因而較早被洗脫。較小的蛋白質可以進入部分或全部孔徑,在柱內停留的路徑更長,因而被較晚洗脫。SEC的流動相只用于輸送蛋白質,不參與分離過程,因此通常采用等ocratic洗脫(恒定緩沖液成分)。SEC主要用于三個目的:1)脫鹽或更換緩沖液;2)估算蛋白質的表觀分子量;3)作為精純步驟,分離蛋白質的單體與聚合體,或分析蛋白質的寡聚狀態。其優點是條件溫和,能保持蛋白質活性,但分辨率相對較低,且上樣量小。蛋白分離純化技術通常結合多種分離方法聯用。河南酶蛋白分離純化

混合模式層析的固定相配體設計為能夠同時通過兩種或多種不同的相互作用機制與蛋白質結合,例如靜電相互作用與疏水相互作用的結合,或氫鍵與π-π相互作用的結合。這種多重作用機制使得其選擇性不同于傳統的IEX或HIC,往往能分離用傳統方法難以分開的蛋白質。它可以在高鹽條件下結合帶電荷的蛋白質,這打破了傳統IEX的局限。羥基磷灰石層析是經典的混合模式層析,其同時存在Ca2?位點(與蛋白質的羧基作用,類似陽離子交換)和PO?3?位點(與蛋白質的氨基作用,并有氫鍵和金屬螯合作用)。混合模式層析為純化工藝開發提供了新的有力工具。武漢膜蛋白分離純化操作細節穩定的實驗設備是確保蛋白分離純化順利進行的必要條件。

層析技術是現代蛋白質純化的支柱,其主要原理是利用蛋白質在固定相(層析介質)和流動相(緩沖液)之間分配的差異,因理化性質不同而產生遷移速率差,從而實現分離。固定相被填充在層析柱中,當蛋白質混合物隨流動相流經時,與固定相相互作用力弱的蛋白質先被洗脫,而作用力強的則保留時間更長。根據相互作用的性質,衍生出離子交換、疏水、親和、凝膠過濾等多種層析模式,它們共同構成了一個多維度的純化工具箱。親和層析通常作為純化流程的第一步,旨在從粗提液中快速、特異性地“捕獲”目標蛋白。其原理是利用目標蛋白與固定相上配體之間高親和性的、可逆的生物特異性相互作用。較經典的例子是固定化金屬離子親和層析用于純化帶組氨酸標簽的重組蛋白,以及Protein A/G親和層析用于純化抗體。該方法能在一步之內實現數千倍的純化,極大地提高了純度,并有效濃縮了目標蛋白,是高效純化流程的基石。
FPLC和HPLC都是采用泵系統來精確控制流動相輸送的層析技術,區別于依靠重力流動的傳統柱層析。FPLC系統專為生物大分子(如蛋白質、核酸)設計,使用生物相容性的材料(如PEEK)流路,以中低壓(通常<5 MPa)運行,采用溫和的瓊脂糖或聚合物基質樹脂,旨在保持蛋白質的活性。它非常適合用于IEX, SEC, HIC和親和層析的精確分析和制備。HPLC則通常在更高的壓力下運行(10-40 MPa),使用剛性更強的硅膠基質小顆粒填料,提供極高的分辨率。反相層析(RPC)和離子交換層析(IEX)的HPLC形式常用于分析和小量制備,但HPLC的激烈條件可能使某些蛋白質變性。選擇FPLC還是HPLC取決于對分辨率、速度和蛋白質活性保持的綜合需求。高壓均質技術可用于蛋白質的細胞破碎提取環節。

羥基磷灰石是一種磷酸鈣陶瓷,其層析機制兼具離子交換(與Ca2?位點作用)和金屬親和(與PO?3?位點作用)的特性。它對DNA有強烈的結合能力,并能根據蛋白質的表面電荷分布進行獨特模式的分離。在抗體純化中,HAC常被用于有效去除聚集體和殘留的宿主DNA與Protein A,是一種重要的精純手段。某些三嗪類染料,如Cibacron Blue F3G-A,其結構與NAD?等輔酶相似,因此能特異性結合許多需要核苷酸輔酶的酶(如脫氫酶、激酶)。將這類染料固定化到介質上制成的染料親和層析,提供了成本遠低于傳統生物配體的親和純化方案,雖然特異性可能稍遜,但在許多應用中已足夠有效。蛋白分離純化中的每一步都需要精確的實驗控制。武漢膜蛋白分離純化操作細節
先進的蛋白分離純化技術提高了蛋白質研究的效率。河南酶蛋白分離純化
純化得到的蛋白質,其結構完整不等于功能完整。活性測定是檢驗純化過程是否成功維持蛋白質生物功能的金標準。對于酶,通過測定其催化底物轉化為產物的速率來評估酶活;對于抗體,可通過ELISA或細胞結合實驗評估其親和力與特異性。將活性單位與總蛋白量相比,得到比活力,比活力的提升是衡量純化步驟有效性的較直接指標。重組蛋白表達中引入的親和標簽極大方便了純化,但殘留的標簽可能干擾蛋白質的結構、功能或用于療愈。因此,在純化后期常需去除標簽。這通過在標簽與目的蛋白之間設計一個蛋白酶特異性切割位點來實現,常用酶有凝血酶、腸激酶、TEV蛋白酶等。切割后,通常需要再次使用親和層析將已切除標簽的目標蛋白與標簽、蛋白酶及未切割的蛋白分離開來。河南酶蛋白分離純化
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