醫(yī)療器械（如輸液器、注射器、植入式設(shè)備）若攜帶內(nèi)毒素，可能通過血液、組織接觸引發(fā)異常反應(yīng)或炎癥反應(yīng)。其檢測(cè)需遵循 “模擬臨床使用” 原則：采用浸提液（如 0.9% 氯化鈉溶液或注射用水）在 37℃±1℃下浸提器械表面內(nèi)毒素，再通過 LAL 或 rFC 法檢測(cè)浸提液。不同器械的內(nèi)毒素限值差異明顯：一次性輸液器需≤0.5 EU/device，植入式心臟瓣膜則要求更嚴(yán)格（≤0.06 EU/device）。檢測(cè)時(shí)需注意器械材質(zhì)對(duì)浸提效率的影響，如塑料類器械可能吸附內(nèi)毒素，需優(yōu)化浸提時(shí)間（通常≥1 小時(shí)）或采用超聲輔助提取，確保殘留內(nèi)毒素被充分檢出。

在內(nèi)毒素檢測(cè)的技術(shù)體系中，凝膠法與動(dòng)態(tài)顯色法基于不同原理與特性，形成互補(bǔ)應(yīng)用格局。凝膠法依托鱟試劑與內(nèi)毒素的凝集反應(yīng)，實(shí)現(xiàn)定性或半定量檢測(cè)，其靈敏度覆蓋 0.03EU/ml、0.06EU/ml 等多梯度，60 分鐘即可完成反應(yīng)；檢測(cè)結(jié)果依賴肉眼觀察（180° 倒轉(zhuǎn)判讀凝膠形成），數(shù)據(jù)需手工記錄，配套 內(nèi)毒素凝膠法測(cè)定儀（恒溫儀） 即可開展，雖自動(dòng)化程度有限，但操作簡(jiǎn)潔，適用于生產(chǎn)環(huán)節(jié)的快速初篩。與之相比，動(dòng)態(tài)顯色法通過監(jiān)測(cè)反應(yīng)混合物吸光度或透光率的變化（如達(dá)預(yù)設(shè)檢測(cè)值的反應(yīng)時(shí)間、信號(hào)增速）實(shí)現(xiàn) 定量檢測(cè) ，靈敏度拓展至 5-0.005EU/ml ，60-90 分鐘反應(yīng)時(shí)長(zhǎng)雖略長(zhǎng)，卻可借助酶標(biāo)儀或全自動(dòng)內(nèi)毒素檢測(cè)分析儀完成全流程自動(dòng)化操作—軟件實(shí)時(shí)采集數(shù)據(jù)，契合藥品生產(chǎn)質(zhì)量管理規(guī)范（GMP）對(duì)數(shù)據(jù)追溯與精度的要求。二者各有側(cè)重：凝膠法以 “快速定性” 服務(wù)基礎(chǔ)防控，動(dòng)態(tài)顯色法憑 “準(zhǔn)確定量 + 自動(dòng)化” 支撐嚴(yán)苛質(zhì)控，共同為內(nèi)毒素檢測(cè)提供靈活適配的技術(shù)路徑。

樣品中的高滲透性成分（如高濃度鹽、糖）會(huì)通過改變反應(yīng)體系滲透壓，抑制鱟試劑反應(yīng)，影響內(nèi)毒素檢測(cè)結(jié)果。例如，濃度為 70% 的葡萄糖溶液、高濃度氯化鈉溶液等，會(huì)形成高滲透壓環(huán)境，導(dǎo)致鱟試劑中的蛋白質(zhì)脫水變性，喪失酶活性，進(jìn)而使內(nèi)毒素?zé)o法被正常檢測(cè)，出現(xiàn)假陰性。這類高滲透性基質(zhì)的干擾機(jī)制明確 —— 通過破壞蛋白質(zhì)結(jié)構(gòu)影響酶促反應(yīng)，且干擾程度與濃度正相關(guān)。為消除這類干擾，解決方案是使用內(nèi)毒素檢查用水稀釋樣品：根據(jù)樣品滲透性高低，逐步稀釋至適宜濃度（通常需稀釋至滲透壓與生理鹽水接近），降低對(duì)蛋白質(zhì)的脫水作用，恢復(fù)鱟試劑中酶的活性。稀釋過程中需注意，稀釋倍數(shù)需在方法驗(yàn)證確定的 “無干擾稀釋范圍” 內(nèi)，避免因過度稀釋導(dǎo)致內(nèi)毒素濃度低于檢測(cè)限，確保內(nèi)毒素檢測(cè)既能規(guī)避高滲透性抑制，又能準(zhǔn)確捕捉微量?jī)?nèi)毒素。

內(nèi)毒素檢測(cè)常與熱原檢測(cè)混淆，二者既有關(guān)聯(lián)又有區(qū)別：熱原是指所有能引起發(fā)熱的物質(zhì)（包括內(nèi)毒素、病毒、真菌等），通過傳統(tǒng)家兔熱原試驗(yàn)檢測(cè)；內(nèi)毒素是熱原的主要成分（占 90% 以上），檢測(cè)更具特異性。目前，家兔熱原試驗(yàn)因操作復(fù)雜、動(dòng)物成本高，已逐漸被單核細(xì)胞活化反應(yīng)測(cè)定法（MAT）替代，但部分產(chǎn)品（如放射性質(zhì)藥物、血液制品）仍需保留家兔試驗(yàn)作為補(bǔ)充。法規(guī)要求內(nèi)毒素檢測(cè)結(jié)果需與熱原風(fēng)險(xiǎn)關(guān)聯(lián)，若內(nèi)毒素檢測(cè)合格但臨床出現(xiàn)熱原反應(yīng)，需排查是否存在非內(nèi)毒素類熱原，通過聯(lián)合檢測(cè)確保產(chǎn)品安全性。

實(shí)驗(yàn)數(shù)據(jù)充分證明，內(nèi)毒素檢測(cè)重組級(jí)聯(lián)試劑（rCR）與天然鱟試劑的檢測(cè)結(jié)果具有高度等效性，可實(shí)現(xiàn)方法無縫切換。對(duì)細(xì)胞培養(yǎng)輔料、凍干甲型肝炎疫苗、單抗 A/B 等 8 類代表性樣品的平行檢測(cè)顯示，rCR 的檢測(cè)平均值為 0.001-0.026EU/mL，天然鱟試劑為 0.002-0.034EU/mL，兩者偏差≤0.003EU/mL。加標(biāo)回收率方面，rCR 為 70%-175.4%，天然鱟試劑為 82.2%-156.6%，均處于 50%-200% 的合格范圍。批內(nèi)精密度上，rCR 的 CV 值為 0.524%-14.716%，天然鱟試劑為 0.908%-12.348%，均滿足法規(guī)對(duì)精密度的要求。這種等效性確保了實(shí)驗(yàn)室在切換至重組試劑時(shí)，歷史數(shù)據(jù)和工藝控制標(biāo)準(zhǔn)的連續(xù)性，降低方法轉(zhuǎn)換風(fēng)險(xiǎn)。

內(nèi)毒素檢測(cè)的實(shí)驗(yàn)方案需遵循“標(biāo)曲可靠性驗(yàn)證（靈敏度復(fù)核）-稀釋倍數(shù)計(jì)算-干擾試驗(yàn)”的完整流程，以保障檢測(cè)結(jié)果準(zhǔn)確合規(guī)。首先進(jìn)行標(biāo)曲可靠性試驗(yàn)，用標(biāo)準(zhǔn)內(nèi)毒素制備至少3個(gè)濃度的稀釋液（相鄰濃度間稀釋倍數(shù)不超過10，下限濃度不低于鱟試劑標(biāo)示檢測(cè)限），每濃度設(shè) 3 支平行管，同時(shí)做2支陰性對(duì)照；當(dāng)陰性對(duì)照的吸光度小于或透光率大于標(biāo)準(zhǔn)曲線下限的檢測(cè)值或反應(yīng)時(shí)間大于標(biāo)準(zhǔn)曲線下限的反應(yīng)時(shí)間，對(duì)數(shù)據(jù)進(jìn)行線性回歸，相關(guān)系數(shù)r的幅值≥0.980時(shí)試驗(yàn)方有效，否則需重新操作。接著按公式 L=K/M 確定樣本內(nèi)毒素限值，K 值依給藥途徑而定，M結(jié)合人均60kg體重、1.62m2 體表面積及上限給藥劑量計(jì)算，也可參考藥典行標(biāo)。隨后明確有效稀釋上限倍數(shù)（MVD），即供試品允許稀釋的上限倍數(shù)，確保在此范圍內(nèi)檢測(cè)限值。再開展樣本干擾試驗(yàn)，制備供試品溶液（A）、供試品加標(biāo)溶液（B，加標(biāo)濃度為標(biāo)曲中點(diǎn)）、標(biāo)準(zhǔn)曲線溶液（C）及陰性對(duì)照（D），按公式 R=(Cs-Ct)/λm×100%計(jì)算加標(biāo)回收率，50%-200%為合格；若鱟試劑、生產(chǎn)工藝等發(fā)生變化，需重新進(jìn)行干擾試驗(yàn)，保障內(nèi)毒素檢測(cè)的可靠性。