PDX斑馬魚模型（Patient-DerivedXenograftZebrafishModel）是一種將患者tumor組織直接移植到斑馬魚體內的異種移植技術。其關鍵原理在于利用斑馬魚早期胚胎缺乏特異性免疫系統的特性，使人類腫瘤細胞能夠高效存活并增殖。與傳統小鼠PDX模型相比，斑馬魚模型具有明顯優勢：實驗周期短至3-7天，而小鼠模型需3-6個月；移植成功率可達60%-80%，遠高于小鼠模型的30%-50%；單次實驗只需100-200個腫瘤細胞，樣本需求量只為小鼠模型的1/10。例如，浙江省人民醫院團隊通過優化低溫保存技術，將卵巢ancer組織移植成功率提升至67%，且斑馬魚胚胎移植后存活率達100%。此外，斑馬魚胚胎透明特性支持實時活的體成像，研究者可通過熒光標記技術動態監測tumor增殖、血管生成及轉移過程，為藥物療效評估提供可視化數據。斑馬魚的心臟結構簡單，卻有規律跳動，是心血管研究的好對象。斑馬魚基因敲除科研實驗平臺

斑馬魚PDX平臺的技術革新離不開多學科交叉融合。環特生物通過CRISPR/Cas9基因編輯技術，構建了BAMBI基因過表達的結腸ancer斑馬魚模型，揭示了該基因促進肝轉移的分子機制。在免疫醫療領域，研究者利用患者外周血重建人免疫系統斑馬魚，聯合tumor類organ構建免疫共培養體系，成功模擬了CAR-T細胞醫療的體內環境。人工智能技術的引入進一步提升了平臺效能，德國康斯坦茨大學開發的EmbryoNet深度學習系統，可自動識別斑馬魚胚胎發育階段并篩選抑ancer藥物，將藥物篩選周期從數月縮短至72小時。此外，微流控芯片技術與光學成像的結合，實現了胚胎的自動化固定與動態監測，確保了實驗數據的可靠性與重復性。斑馬魚基因編輯科研課題外包一些環境污染物會影響斑馬魚的生長發育和繁殖能力。

斑馬魚的胚胎發育過程極具研究價值。其胚胎在體外發育，并且在早期階段是透明的，這一特性使得研究人員能夠借助顯微鏡直接觀察到胚胎內部細胞的分裂、分化以及各種organ的形成過程，猶如在一個天然的 “透明實驗室” 中見證生命的孕育與成長。在受精后的 24 小時內，斑馬魚胚胎就已經開始分化出多個胚層，隨后，心臟、神經管、眼睛等重要organ逐漸形成，整個胚胎發育過程在較短時間內完成，通常在 3 - 5 天內幼魚即可孵化。這種快速而有序的發育模式為研究發育生物學的基本原理和機制提供了較好的機會。

看似專注于軀體架構規劃的斑馬魚cdx基因，實則與神經發育也有著千絲萬縷聯系。在胚胎腦部及脊髓雛形初現階段，cdx基因悄然施展影響力。它間接調控神經干細胞的增殖與分化節拍，確保生成足量神經元，滿足斑馬魚早期感知外界、驅動身體所需。舉例而言，科研人員利用基因編輯技術適度降低cdx表達量后，斑馬魚幼魚出現游泳姿態異常，頻繁打轉、失衡側翻。深入探究得知，脊髓中運動神經元發育受損，軸突延伸受阻，無法精細連接肌肉纖維，致使肌肉接收指令紊亂。cdx基因還參與構建神經回路，協同其他神經發育關鍵基因，塑造從感覺輸入到運動輸出的信息傳遞路徑，助力斑馬魚神經系統精細“布線”，在水中靈動游弋、機敏避險。斑馬魚的聽覺organ能接收水中的聲波信號并作出反應。

PDX斑馬魚模型在抗tumor藥物篩選中展現出高度臨床相關性。CharlesRiver公司的研究顯示，非小細胞肺ancer（NSCLC）斑馬魚PDX模型對紫杉醇和厄洛替尼的響應率與患者真實醫療有效率相似度達85%，且模型預測淋巴結轉移的敏感性為91%、特異性為62%。在卵巢ancer領域，黃萍教授團隊構建的模型對卡鉑的敏感性預測與臨床結果一致性高達81%，ROC曲線下面積（AUC）達0.818，明顯優于傳統影像學預測方法。這種精細性源于模型對tumor異質性的保留——患者tumor組織中的基因突變譜、代謝特征及微環境相互作用在斑馬魚體內得以維持。例如，環特生物建立的胃ancerPDX模型中，64%的患者組織成功增殖并形成血管網絡，其藥物敏感性數據與FOLFOX/FOLFIRI化療方案的臨床響應率高度吻合。許多藥物研發初期，會以斑馬魚為模型，測試藥物毒性與功效。t型迷宮實驗斑馬魚

斑馬魚的口腔中有牙齒，可輔助攝取食物并進行初步咀嚼。斑馬魚基因敲除科研實驗平臺

環特一站式斑馬魚實驗室建設與運營解決方案，是環特實驗室面向醫院、疾控中心、海關、科研院所和藥物、保健食品和化妝品企業等行業，推出的一項基于斑馬魚實驗平臺構建與技術應用為目標的整體性技術平臺建設服務。我們以自身近20年斑馬魚技術應用的深厚積累為依托，通過深刻總結斑馬魚從養殖、模型開發、設備配置、資質認可/認證、標準化運營管理，再到成果輸出等能力模塊的發展需求，從而形成一套專業高效、可信賴的技術解決方案：涵蓋實驗室規劃設計、軟硬件能力配置、斑馬魚合規魚種供應、試劑耗材、人員培訓與運維技術咨詢等全周期綜合服務。斑馬魚基因敲除科研實驗平臺