實驗樣本分類實驗一般采取樣本有：血液樣本、樣本和細胞樣本。通常，樣本采集后，應立即用等滲溶液（PBS或生理鹽水）盡量把血液漂洗干凈（除非血液也是分析對象），用濾紙或紗布吸干，把樣本分切成幾分，每份的體積約2個黃豆大小，每份用一個管子裝。血液樣本的采集應根據不同實驗的要求，將會采取不同策略。血清樣本：全血中不加抗凝劑，血液凝固后取出的不含凝血因子的淡黃色透明液體。（全血標本室溫放置2小時3000rpm/min離心15min）血漿樣本：全血中加抗凝劑，血液凝固后取出的含凝血因子的淡黃色透明液體。（可用EDTA或肝素作為抗凝劑，標本采集后30分鐘內于2-8℃，3000rpm/min離心15min）如果是做生化\ELISA等檢測可以考慮血漿和血清，根據獲得的樣本量可考慮分裝成100-500μl/管，可避免反復凍融造成的檢測誤差。生化：建議優先選擇血清，其次選擇肝素抗凝血漿；ELISA：建議優先選擇血清，其次選擇肝素或EDTA抗凝血漿；凝血實驗：只能選擇枸櫞酸鈉抗凝血漿；血常規：只能選擇EDTA抗凝全血；如果要收集其中的白細胞、血小板等建議用抗凝全血。如果要做流式建議用專門的流式用血液收集管，防止表面抗原的丟失，或者盡快安排就近檢測。樣本處理取樣完后。常用于研究細胞的成瘤能力、細胞的轉移、細胞的耐藥和靶分子對腫瘤細胞的發展的影響等等。河北疾病模型科研技術服務構建

m6A研究又有新手段了？趕緊來了解一下吧！欄目：研究動態發布時間：2019-08-14RNA甲基化m6A是如今的研究熱點之一,Cell上新發表了一篇介紹不使用m6A抗體的檢測mRNAm6A水平的Resource文章......RNA甲基化m6A是如今的研究熱點之一，目前主要的研究思路包括差異表達的write，reader和eraser基因分析；m6A抗體檢測全轉錄組甲基化水平；分析m6A甲基化水平變化的靶基因和下游機制研究。而在7月25日的Cell上新發表了一篇介紹不使用m6A抗體的檢測mRNAm6A水平的Resource文章，小編時間和大家分享一下。作者開發這一方法的前提是有研究報道了MazF能特異性的識別無修飾的ACA序列并發揮RNA酶活性在ACA之前剪切底物。但ACA序列的個A發生m6A甲基化之后將無法被MazF所識別，如圖一所示。圖1MazFRNA酶作用示意圖根據這一原理，作者將純化后的mRNA進行MazF酶處理，然后再對打斷的RNA進行逆轉建庫測序。對于無修飾的位點，ACA處被完全剪切，測序reads正好分布于該位點上下游而且比對至該處的上下游reads數是相同的.如圖2所示。而甲基化位點的reads會包含上下游的序列。作者開發了MAZTER-MINE軟件包專門進行分析（圖3）。湖北外包科研技術服務實驗室EdU細胞增殖檢測是一種新型的細胞增殖檢測方法。

二甲苯Ⅰ、Ⅱ各15min至透明。（2）放入二甲苯和石蠟等量混合液處理15min，再放入石蠟Ⅰ、Ⅱ透蠟各50~60min。透蠟在恒溫箱內進行，箱內溫度保持在55~60℃左右。4、包埋（1）用鑷子夾取蠟模在酒精燈上稍加熱，并倒入少許從溫箱中取出的純石蠟。（2）再將鑷子在酒精燈上稍加熱，夾取材料將切面朝下放入蠟模中，排列整齊，再放上包埋盒，輕輕倒入熔蠟。5、切片、展片、貼片（1）將包埋好的石蠟塊固定在切片機上，調整厚度調節器到所需的切片厚度，一般為4~6μm。（2）切下的組織薄片要放到加熱的水中燙平，再貼到載玻片上，放45℃恒溫箱中烘干。二、HE染色1、脫蠟、復水（1）保持水浴鍋溫度為60℃，將切片放入干燥的染色缸內，放入水浴鍋中，30min至蠟熔化。（2）石蠟切片經二甲苯Ⅰ、Ⅱ脫蠟各5min，然后放入100%、95%、90%、80%、70%各級酒精溶液中各3~5min，再放入蒸餾水中3min，以便染料可以進入組織。2、染色、脫水（1）切片放入蘇木精中染色約10~30min，用流水沖洗約15min，使切片顏色變藍。（2）將切片放入1%鹽酸乙醇液中褪色，幾秒后見切片變紅、顏色較淺即可，后將切片再放入流水中使其恢復藍色。（3）切片放入50%、70%、80%乙醇中各3~5min。

準備碎冰和。把膜置于甲醇溶液中活化1分鐘，然后轉移至轉膜液中平衡3分鐘后備用。2、轉膜組裝轉膜三明治夾，這一步很關鍵，重要的是膠和膜之間不能有氣泡且膜與膠要保證貼合緊密(否則會翻車)，可以加多點轉膜液泡著。組裝好后加滿轉膜液，設置電源參數，我習慣恒流轉膜，200-280毫安，1-2小時，根據分子量定，如50KD的分子用60分鐘就夠了。如果一個電源帶兩個轉膜大槽即四塊膠，我就會用恒壓70-110V。這個過程重要的是做好降溫。這里簡單說一下蛋白分子量與玻璃板厚度，分離膠的濃度，轉膜電源參數的選擇問題。如果是能用1毫米的玻璃板就不用，因為轉膜是在電場的作用下蛋白分子從膠上遷移到膜上，1毫米膠的蛋白遷移距離要比。選擇更薄的膠蛋白轉膜時間可以減少，從而減少發熱，以免膠變形，條帶也會更好看。然后是分離膠的濃度，如果是150—200KD的分子選10%以下的的分離膠，200—300KD的選8%的,300KD以上的選6%的，小于30KD的200mA30分鐘，30-100KD的按分子量的數值算，如70KD，250mA70分鐘;100-150KD的250mA100分鐘;150—300KD的分子轉膜條件用280毫安(以上均是對于，)，120分鐘足矣，前提是膠的濃度相適應。五、封閉孵一抗1、封閉轉膜結束后。由于大部分研究使用到的是人類來源的細胞，種植到免疫正常的動物體內會發生免疫排斥反應。

必須仔細考慮所有可能影響實驗的條件和技術參數以獲得可重復且一致的實驗結果。因此，要求實驗人員深入了解和熟練掌握操作過程才能準確地構建CLP模型。造模評價該模型通過模型動物自身引發膿毒癥，與臨床膿毒癥類似的地方在于有連續分散的細菌源，血中內檢出率及細菌培養陽性率高，動物體溫降低以及血流動力學早期高排低阻晚期低排低阻的特征也與臨床相仿，在建模的同時模擬臨床膿毒癥方法，輔以充分的液體復蘇和適當輔助(如藥物)，另外這個模型可控性高，標準化水平高。該模型中膿毒癥的嚴重程度受3個重要因素的影響：結扎盲腸的長度、穿孔針的大小和CLP后的支持。結扎盲腸的長度是死亡率的主要決定因素，隨著結扎盲腸的長度的增加，促炎細胞因子的水平也在增加。來源：[1]李晗,田李均,韓旭東.膿毒癥體內外模型研究進展.中國與化療雜志,2020,20(01):.[2]彭鳳輝,鄧曉彬,呂立文.膿毒癥動物模型的研究進展.廣西醫科大學學報,2020,37。干貨分享｜選對實驗室常用培養基DMEM和1640。浙江疾病模型科研技術服務培養

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外泌體作為藥物載體由于特殊的結構和循環方式，外泌體作為藥物運輸的載體具有獨特的優勢。例如外泌體的尺寸分布能夠增強滲透滯留效應，從而有選擇性地深入組織;其外層磷脂雙分子層可以保護內容物不受各種生物酶的影響，維持各種生物分子的活性;外泌體普遍存在于各種體液和組織中，其體積小，結構、組成與細胞膜類似，導致外泌體可以在避開免疫系統監督的同時深入組織內部，有較好的生物相容性;當采用內源外泌體時，能明顯降低其他藥物載體可能引起的有害免疫反應;除此之外，某些細胞來源或經特殊修飾過的外泌體具有良好的特異性，可以與特定的或組織結合。因此，載藥成為外泌體研究的一個重要分支，具有良好的應用前景。在外泌體中引入藥物的方式包括體內裝載和體外裝載兩種。體內藥物裝載可以通過傳統方法(如病毒轉染、脂質體轉染或電穿孔等)轉染來源細胞，編碼感興趣的RNA或蛋白質，也可以使藥物與來源細胞共混，使細胞分泌產生含有目標生物分子的外泌體。體外藥物裝載則首先需要得到純化的外泌體，然后將感興趣的藥物通過電穿孔或脂質體轉染等方法裝入純化的外泌體。外泌體內可裝載的藥物包括小分子化學藥物、蛋白質和多肽、核酸藥物、天然產物等。河北疾病模型科研技術服務構建