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江蘇組織科研技術服務實驗室

來源: 發布時間:2025-11-22

我們知道WB實驗步驟繁瑣,一次實驗歷時也不短,從提蛋白到顯影結束可能要三天,我們就講一下這里面的一些關鍵環節。一、蛋白提取及變性1、提取蛋白很多經驗豐富的WB實驗者都深有體會,蛋白提取是影響結重要的環節之一。該過程重要的是防降解和保證蛋白濃度不要太低。防降解主要有兩點,一是裂解前注意保持樣品處于低溫環境中,二是裂解時加入足夠的蛋白酶抑制劑。我們習慣先用冰冷的PBS做心臟的體循環灌注,然后冰上取腦,分離各腦區(嗅球,皮層,海馬,中腦,小腦,延髓,丘腦,紋狀體)后置于,用液氮速凍后轉移至-80度冰箱長期保存。接著是保證蛋白濃度,即要加入適量的裂解液,加太少會使蛋白提取不充分,加太多會讓蛋白濃度太低,一般經驗是這樣的,細胞樣品例如一個六孔板的細胞加60微升的裂解液,動物組織的話每毫克組織加10微升裂解液。還要加上超聲破碎處理,具體方案見討論部分。如果沒有超聲破碎儀,那就用1毫升注射器不斷抽吸,冰上反復抽吸1分鐘左右,注意不要產生過多氣泡。(需要灌注取材的視頻可以私聊獲取,由于文件過大,又比較血腥,不宜直接放到文章里。)2、蛋白變性加入上樣緩沖液后100攝氏度煮10分鐘,這里的上樣緩沖液有兩種可選。這種技術是將蛋白質視為抗原,并利用抗體與之進行特異性結合的特性,來進行研究。江蘇組織科研技術服務實驗室

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采用opti-MEM和Lipo3000分別轉染含有目的基因的pMSCV-eGFP、VSV、GAG質粒及對照載體,每皿加入脂質體-質粒轉染混懸液按購買脂質體相關說明書操作定量。繼續培養24h。2)24小時后,將培養基更換為新鮮的DMEM完全培養基,放進細胞培養箱繼續培養48~72h。3)48~72h后收集上層培養液,并過μm濾膜,采用ELISA法對所獲得的慢載體進行滴度測定。如不及時使用可以凍存于-80℃。3、慢轉染1)轉染前1天將細胞接種6孔培養板,時細胞的融合率約為50%,前需換液,加入1mLDMEM完全培養基。2)冰浴融化后加入相應體積的液及聚凝胺(Polybrene),混勻后放入37℃孵箱中繼續培養3)4h后補充1mL培養基,14h后換液(24h內換液即可)。4)72h后用倒置顯微鏡觀察熒光,監測效率,出現較多熒光時將等量的轉染細胞和未轉染細胞分別加入等濃度Puromycin(Puromycin或其他篩選濃度需要事先摸索)。5)待未轉染細胞全部死亡并且可觀察到滿意熒光量時,降低Puromycin濃度培養。也可以挑去單克隆細胞株進行進一步培養,以得到滿意的穩定表達目的基因的細胞株。6)使用qRT-PCR和Westernblot的方法檢測目的基因的表達量和蛋白水平是否顯著提高。7)由此可得三組細胞株:a.正常細胞株;b.空載載體的細胞株。江蘇哪里有科研技術服務購買細胞轉染又分為瞬時轉染和穩定轉染,瞬時轉染是指外源基因進入受體細胞后.

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應退回純酒精中重新脫水,然后再透明,否則切片難以鏡檢。(4)二甲苯應盡量保持無水,應經常更換,或用紗布包無水硫酸銅放入染色缸內吸收水分。5.透蠟注意事項(1)透蠟的目的是除去組織中的透明劑(如二甲苯等),使石蠟滲透到組織內部達到飽和程度以便包埋。透蠟時間根據組織大小而定。(2)盡量保持在較低溫度中進行,以石蠟不凝固為度。(3)透蠟溫度要恒定,不可忽高忽低。(4)操作要迅速,力求在短的時間內完成石蠟透入過程,以免引起組織變硬、變脆、收縮等。(5)注意溫度不要過高,以免組織發脆。6.染色水洗注意事項(1)染色原理:伊紅主要染細胞質,著色濃淡應與蘇木精染細胞核的濃淡相配合,如果細胞核染色較濃,細胞質也應濃染,以獲得鮮明的對比。(2)染色時間應根據染色劑的成熟程度及室溫高低,適當縮短或延長。室溫高時促進染色,染色時間可短些,否則可適當延長時間,冬季室溫低時可放入恒溫箱中染色。(3)注意流水不能過大,以防切片脫落。(4)如果細胞核染色較淺,細胞質也應淡染??稍谝良t乙醇液中滴加數滴冰醋酸助染,促使細胞質容易著色,并且經乙醇脫水時不易褪色。

外泌體的功能外泌體可能作為細胞之間物質和信號通訊的途徑,不同的細胞通過分泌攜帶不同組分的外泌體實現細胞間通訊,這些外泌體被受體細胞吸收,通過物質交換或釋放內含物實現物質和信號的交流。外泌體與受體細胞的信息交流可能通過以下4種途徑實現:外泌體表面膜蛋白質被目的細胞表面的受體識別,從而靶細胞;外泌體在蛋白酶作用下產生的表面膜蛋白質碎片可作為目的細胞表面受體的配體;外泌體脂膜可以與目的細胞膜融合,將蛋白質和RNA等內容物釋放進去,此類膜融合可能改變靶細胞的一些膜特性,例如脂質和膜蛋白質的密度及種類;目的細胞通過胞吞的形式攝入外泌體經由以上幾種途徑,外泌體將其攜帶的生物信息運輸到周邊靶細胞或經血液等體液運輸而被遠處組織細胞攝取,進而影響目的細胞的基本功能和基因表達。幾乎所有的細胞都可以在自發或在一定刺激條件下產生外泌體,不同的細胞產生的外泌體具有不同的功能,這些外泌體參與了一系列生理和病理過程,如發生與發展、抗原呈遞、免疫調節、組織愈合等。此外,外泌體與疾病的研究表明:外泌體可能在代謝性疾病的出現以及心血管健康中發揮作用??梢云毡閼糜谏镝t學研究、藥物篩選、腫、瘤診斷等領域。

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實驗樣本分類實驗一般采取樣本有:血液樣本、樣本和細胞樣本。通常,樣本采集后,應立即用等滲溶液(PBS或生理鹽水)盡量把血液漂洗干凈(除非血液也是分析對象),用濾紙或紗布吸干,把樣本分切成幾分,每份的體積約2個黃豆大小,每份用一個管子裝。血液樣本的采集應根據不同實驗的要求,將會采取不同策略。血清樣本:全血中不加抗凝劑,血液凝固后取出的不含凝血因子的淡黃色透明液體。(全血標本室溫放置2小時3000rpm/min離心15min)血漿樣本:全血中加抗凝劑,血液凝固后取出的含凝血因子的淡黃色透明液體。(可用EDTA或肝素作為抗凝劑,標本采集后30分鐘內于2-8℃,3000rpm/min離心15min)如果是做生化\ELISA等檢測可以考慮血漿和血清,根據獲得的樣本量可考慮分裝成100-500μl/管,可避免反復凍融造成的檢測誤差。生化:建議優先選擇血清,其次選擇肝素抗凝血漿;ELISA:建議優先選擇血清,其次選擇肝素或EDTA抗凝血漿;凝血實驗:只能選擇枸櫞酸鈉抗凝血漿;血常規:只能選擇EDTA抗凝全血;如果要收集其中的白細胞、血小板等建議用抗凝全血。如果要做流式建議用專門的流式用血液收集管,防止表面抗原的丟失,或者盡快安排就近檢測。樣本處理取樣完后。江蘇組織科研技術服務實驗室

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