膿毒癥動物模型必須具備以下基本要素：有膿毒癥典型的高排低阻血流動力學表現和高代謝狀態；伴發多個功能障礙；有較高的自然死亡率，根據膿毒癥的轉歸，要求動物模型的自然死亡率達到50%～70%；膿毒癥是嚴重引起機體的炎癥反應過度造成的自身損傷，不是細菌和內對機體的直接損傷，故出現功能障礙及動物死亡距膿毒癥模型制備應有一定的時間間距。一般在制模后6～12h后發生的功能障礙或死亡屬全身炎癥反應所致。實驗動物的選擇在制作動物模型時多選用雄性小鼠，因為雌性小鼠較雄性小鼠更能耐受膿毒癥和失血性休克，且進入發期的雌性小鼠性水平變化很大，而雄性小鼠在膿毒癥時更易于發生免疫抑制。為什么選擇CLP模型？盲腸結扎穿孔模型（CLP）模型是接近于人類膿毒癥機制的模型，被稱為膿毒癥模型的“金標準”。CLP技術在20世紀70年代被建立。CLP模型非常適宜用于防治膿毒癥或膿毒性休克新藥的臨床前觀察造模方法CLP膿毒癥模型的建立主要分為兩個階段：盲腸遠端結扎和盲腸穿刺。首先是手術引發的結扎部位組織變性壞死引起局部炎癥反應，其次是穿孔后使糞便內容物漏入腹膜引起多菌性細菌性腹膜炎，進而誘發全身性炎癥反應。純干貨Western blot （WB）條帶灰度統計與GraphPad作圖.貴州動物科研技術服務實驗室

1.首要原則：細胞不重要情況下立即丟棄，培養箱滅菌，所用培養基也都要丟棄，器械等重新滅菌或拆用新的。2.細菌污染一般都救不回來了，發現的時候培養基一般都很渾濁且細胞都死了3.污染且細胞很重要時：遇到念球菌污染，且細胞為基因改造細胞，非常重要。如231貼壁乳腺細胞，發現細胞周圍出現很小的串珠透亮圓點，非常像念球菌污染，此時細胞狀態尚可，且污染少。處理如下：用預熱或室溫PBS清洗3次，可適當振搖，將污染沖洗下來。隨后加入10-20%雙抗到培養瓶，置于37度培養箱1h，之后再用PBS清洗三遍，直至視野下無可見污染。此時細胞也被沖下大部分，因此此方法只適用在細胞貼壁強，狀態好，密度高時使用。之后每天再更換培養基，每次用PBS沖洗2遍。過幾天細胞狀態尚可時，消化離心時用500r，3min，去掉上清，重復3次。這個方法是根據文獻可利用念球菌和細胞體積重量差異實現分離。基本上這一步做完以后，污染就基本了，接下來就注意多觀察，勤換液就行。黑龍江科研技術服務技術原代心肌細胞培養傳代。

實驗樣本分類實驗一般采取樣本有：血液樣本、樣本和細胞樣本。通常，樣本采集后，應立即用等滲溶液（PBS或生理鹽水）盡量把血液漂洗干凈（除非血液也是分析對象），用濾紙或紗布吸干，把樣本分切成幾分，每份的體積約2個黃豆大小，每份用一個管子裝。血液樣本的采集應根據不同實驗的要求，將會采取不同策略。血清樣本：全血中不加抗凝劑，血液凝固后取出的不含凝血因子的淡黃色透明液體。（全血標本室溫放置2小時3000rpm/min離心15min）血漿樣本：全血中加抗凝劑，血液凝固后取出的含凝血因子的淡黃色透明液體。（可用EDTA或肝素作為抗凝劑，標本采集后30分鐘內于2-8℃，3000rpm/min離心15min）如果是做生化\ELISA等檢測可以考慮血漿和血清，根據獲得的樣本量可考慮分裝成100-500μl/管，可避免反復凍融造成的檢測誤差。生化：建議優先選擇血清，其次選擇肝素抗凝血漿；ELISA：建議優先選擇血清，其次選擇肝素或EDTA抗凝血漿；凝血實驗：只能選擇枸櫞酸鈉抗凝血漿；血常規：只能選擇EDTA抗凝全血；如果要收集其中的白細胞、血小板等建議用抗凝全血。如果要做流式建議用專門的流式用血液收集管，防止表面抗原的丟失，或者盡快安排就近檢測。樣本處理取樣完后。

建議按照2×106每孔的數量將293T細胞均勻鋪入。(2)第二天：在24小時之內，觀察293T細胞的匯合度在90%~95%之間時，向其中加入DNA-脂質體復合體，DNA-脂質體復合體制備方法如下：a)輕輕混勻LipoMax，根據說明書加入相應量于500μlOpti-MEM無血清培養基中，混合均勻并置于室溫5分鐘。b)在500μlOpti-MEM無血清培養基中稀釋DNA，總質量為15μg按照載體質粒:psPAX2:=4:3:1的比例加入DNA。c)將稀釋后的LipoMax和稀釋后的DNA輕輕混勻，常溫靜置20分鐘，形成DNA-LipoMax復合體。(3)將DNA-LipoMax復合體輕柔地滴加至細胞培養皿中，輕輕搖晃培養皿混勻，放入細胞培養箱中培養。(4)病毒收集濃縮病毒：加入DNA-LipoMax復合體48小時后，收集病毒上清，同時加入10ml預溫的293T培養基到細胞培養皿中。將收集到的病毒上清存在4℃冰箱中;收集72小時病毒上清，與48小時病毒上清混在一起。將離心機溫度降溫到4℃，600g，離心5分鐘，去除其中的細胞碎片，上清液經μm濾頭過濾，加入病毒濃縮液，配制濃縮病毒液。將濃縮后的病毒放于4℃冰箱搖床上，旋轉過夜。第二天，4度離心機，3000~4000g離心15分鐘。棄掉上清液，加入1Xpbs或培養基重懸。動物模型的表現與人類疾病可能存在差異，因此需要謹慎使用。

外泌體的抑制作用外泌體水平升高通常與不同類型的惡化相關，一些研究人員希望能通過降低外泌體到正常水平來防止不良預后。從這個角度出發，許多正在進行的研究旨在通過調節外泌體生成分泌的過程或通過特異性靶向其成分抑制其與靶細胞的相互作用來調節外泌體的產生。如今我們對外泌體機制和不同生理和病理條件下的功能的理解呈指數級增長，雖然目前其生物學功能還未完全解析清楚，但研究者們在許多領域均已對其進行了深入探索。外泌體不是廢物顆粒，而是細胞間通訊的關鍵介質，作為宿主細胞的衛星，外泌體包含大量的生物信息，其功能超出了初的預期，宿主細胞控制著外泌體的內容物，從而改變了自己或其他細胞的命運。其次，外泌體對的進展和轉移有著強烈的影響，可以通過外泌體預測轉移的部位并建立轉移前的生態位。參考文獻：[1]高方園,焦豐龍,張養軍,秦偉捷,錢小紅.外泌體分離技術及其臨床應用研究進展[J].色譜,2019,37。細胞是生命的基本單位，所有生物體都是由一個或多個細胞組成的。下面就跟著上海東寰一起看看吧。乳鼠科研技術服務服務

細胞培養板的選購要注意哪些?貴州動物科研技術服務實驗室

應根據所檢測指標的要求，需采取不同策略處理。在如今分子學當道的現實背景下，動物實驗除了對實驗動物的體征及生理指標進行全的監控外，各種分子檢測甚至是組學檢測也開始大行其道，動物實驗結束之后的機制研究成為了實驗的重頭戲。一般來說，動物實驗檢測對象主要包括：（1）體液中各類因子定性及定量檢測由于此類檢測對象多為蛋白及各類小分子物質，因此在取樣過程中應注意防止此類物質降解，在獲取后，應及時置于溫（≤-80℃）進行保存，在后續實驗過程中，也應當注意保存條件的穩定性，避免反復凍融。常用的方法便是酶聯免吸附測定（ELISA），除此之外，可利用生化分析儀及不同檢測方法的（比色法、比濁法等）方法對各類生化指標及因子進行定性及定量檢測。（2）生理變化及免組化檢測常用的理檢測多使用H&E染色對細胞質及細胞核進行染色標記，以觀察細胞變化。除此之外，許多特殊染色也在理生理變化中得到了應用，如利用Masson染色檢測纖維化變，Nissl染色檢測神經元損傷，β-半乳糖甘酶染色檢測細胞衰老等。此外，還可以通過免組化技術對某些特異性標記物進行免顯色檢測，達到原位定性或定量檢測的目的。。貴州動物科研技術服務實驗室