外泌體的功能外泌體可能作為細胞之間物質和信號通訊的途徑，不同的細胞通過分泌攜帶不同組分的外泌體實現細胞間通訊，這些外泌體被受體細胞吸收，通過物質交換或釋放內含物實現物質和信號的交流。外泌體與受體細胞的信息交流可能通過以下4種途徑實現:外泌體表面膜蛋白質被目的細胞表面的受體識別，從而靶細胞;外泌體在蛋白酶作用下產生的表面膜蛋白質碎片可作為目的細胞表面受體的配體;外泌體脂膜可以與目的細胞膜融合，將蛋白質和RNA等內容物釋放進去，此類膜融合可能改變靶細胞的一些膜特性，例如脂質和膜蛋白質的密度及種類;目的細胞通過胞吞的形式攝入外泌體經由以上幾種途徑，外泌體將其攜帶的生物信息運輸到周邊靶細胞或經血液等體液運輸而被遠處組織細胞攝取，進而影響目的細胞的基本功能和基因表達。幾乎所有的細胞都可以在自發或在一定刺激條件下產生外泌體，不同的細胞產生的外泌體具有不同的功能，這些外泌體參與了一系列生理和病理過程，如發生與發展、抗原呈遞、免疫調節、組織愈合等。此外，外泌體與疾病的研究表明：外泌體可能在代謝性疾病的出現以及心血管健康中發揮作用。細胞由細胞膜、細胞質、細胞核和細胞器等組成。細胞膜是細胞的外層，它控制物質的進出。上海小鼠科研技術服務培養

準備碎冰和。把膜置于甲醇溶液中活化1分鐘，然后轉移至轉膜液中平衡3分鐘后備用。2、轉膜組裝轉膜三明治夾，這一步很關鍵，重要的是膠和膜之間不能有氣泡且膜與膠要保證貼合緊密(否則會翻車)，可以加多點轉膜液泡著。組裝好后加滿轉膜液，設置電源參數，我習慣恒流轉膜，200-280毫安，1-2小時，根據分子量定，如50KD的分子用60分鐘就夠了。如果一個電源帶兩個轉膜大槽即四塊膠，我就會用恒壓70-110V。這個過程重要的是做好降溫。這里簡單說一下蛋白分子量與玻璃板厚度，分離膠的濃度，轉膜電源參數的選擇問題。如果是能用1毫米的玻璃板就不用，因為轉膜是在電場的作用下蛋白分子從膠上遷移到膜上，1毫米膠的蛋白遷移距離要比。選擇更薄的膠蛋白轉膜時間可以減少，從而減少發熱，以免膠變形，條帶也會更好看。然后是分離膠的濃度，如果是150—200KD的分子選10%以下的的分離膠，200—300KD的選8%的,300KD以上的選6%的，小于30KD的200mA30分鐘，30-100KD的按分子量的數值算，如70KD，250mA70分鐘;100-150KD的250mA100分鐘;150—300KD的分子轉膜條件用280毫安(以上均是對于，)，120分鐘足矣，前提是膠的濃度相適應。五、封閉孵一抗1、封閉轉膜結束后。北京科研技術服務服務科研小白如何摸索自己的預實驗。

應根據所檢測指標的要求，需采取不同策略處理。在如今分子學當道的現實背景下，動物實驗除了對實驗動物的體征及生理指標進行全的監控外，各種分子檢測甚至是組學檢測也開始大行其道，動物實驗結束之后的機制研究成為了實驗的重頭戲。一般來說，動物實驗檢測對象主要包括：（1）體液中各類因子定性及定量檢測由于此類檢測對象多為蛋白及各類小分子物質，因此在取樣過程中應注意防止此類物質降解，在獲取后，應及時置于溫（≤-80℃）進行保存，在后續實驗過程中，也應當注意保存條件的穩定性，避免反復凍融。常用的方法便是酶聯免吸附測定（ELISA），除此之外，可利用生化分析儀及不同檢測方法的（比色法、比濁法等）方法對各類生化指標及因子進行定性及定量檢測。（2）生理變化及免組化檢測常用的理檢測多使用H&E染色對細胞質及細胞核進行染色標記，以觀察細胞變化。除此之外，許多特殊染色也在理生理變化中得到了應用，如利用Masson染色檢測纖維化變，Nissl染色檢測神經元損傷，β-半乳糖甘酶染色檢測細胞衰老等。此外，還可以通過免組化技術對某些特異性標記物進行免顯色檢測，達到原位定性或定量檢測的目的。。

首先，預實驗必須要當做正式實驗來對待（態度要放端正，這是必須的）。預實驗的每一步都需要詳細規劃，多方籌謀。不論是實驗動物的選擇，還是檢測試劑的購買，都盡量和正式實驗統一標準。建議大家先把所有試劑和購買完畢后，再去購買實驗動物。因為動物會長胖，長胖后給劑量就要增加，不僅多花錢，并且還容易影響實驗效果。筆者曾經提前將實驗動物買回，但因為特殊原因沒能購買到造模，終只能忍痛割愛將動物贈送他人，白白虧了一筆血汗錢（那批老鼠在我這兒白吃白喝長得太胖，沒辦法用作造模）。動物及試劑購買首先需要考慮：實驗動物品種、體重、性別、周齡（通常根據既往文獻報道可以獲得答案）、數量（需要考慮到實驗有一定動物死亡率或者動物本身會打架互毆，因此需要提前購買足夠的動物）。動物購買的途徑、安置的地點，飲食管理（一般實驗室會有動物房，也可以從其他地方購買），動物免證明、倫理證明需要提前準備好。實驗相關的試劑和：比如造模和，動物干預所需，陽性選擇及購買（有些購買很困難，必須通過特殊程序才能買到）。如果涉及到有創操作，要提前準備好（建議提前購買），手術。需要了解自身實驗平臺能完成哪些技術。腫瘤細胞侵襲能力檢測在學（遷移、侵襲）和免疫學（遷移、趨化）中是常規實驗。

如胰腺，一般取胰島較多的胰腺尾部；肺應取有細支氣管及帶有軟骨片的小支氣管部。如果實驗需進行多樣本的采集，采集順序應按照：消化，神經系統，皮膚，肌肉等的順序進行。選好塊的切面。熟悉某些成分安排，然后決定其切面的走向；如一長管狀以橫切面較好。切除不需要的部分。特別是周圍的脂肪等，應盡可能掉，否則給固定、脫水、浸蠟、切片等帶來一些不必要的問題。樣品的固定（1）固定的方法：①小塊固定法：從動物取下的小塊，立即置入液態固定劑（這是應用經常的方法）。②注射/灌注固定法：某些塊由于體積過大或固定液極難滲入內部或需要對整個臟器或整個動物進行固定，這時宜采用注射固定法，將固定液注入血管，經血管分支到達整個和全身，從而得到充分的固定。另，空腔比如肺，肺內含有空氣，固定液難以滲入，建議先做肺灌注，使得肺充盈滿固定液以后再進行保存，如果空腔中氣體沒有排出，后續可能影響固定效果（沒有灌注的肺會浮在液體表面不利于固定，切片以后也會看到很多的空泡）。③蒸汽固定法：比較細小而薄的標本，可用鋨酸或甲醛蒸汽固定。主要用于血液或細胞涂片以及某些薄膜的固定。。隨著科技的不斷進步，科研人員將能夠開發出更為精確、實用的動物模型，更好地為人類健康保駕護航。云南大鼠科研技術服務分離

動物疾病模型作為研究工具，在探索疾病發展和檢查的過程中發揮了巨大的作用。上海小鼠科研技術服務培養

轉錄組測序結果及TCGA數據庫分析）圖5RNA-Seq和m6A-seq聯合鑒定SOCS2是介導的m6A修飾的下游靶基因PLoSOne2015,在許多不同種類的RNA中，都已觀察到N6-腺苷(m6A)的甲基化，但其在microRNAs中還沒有被研究。研究者在FTO1C1,FTO2D4和FTO3C3細胞系中，通過敲除m6A甲基轉移酶FTO篩選到表達差異的microRNA,說明miRNA受m6A甲基化的調控。進一步通過MeRIP-Seq發現相當一部分的microRNA具有m6A修飾。通過motif分析，他們發現了區分甲基化和非甲基化microRNA的一致序列。該文章所述的表觀遺傳修飾在基因表達的轉錄調控的復雜性上增加了一個新的層次。圖FTO敲除對甲基化的miRNAs的穩定狀態的影響。參考文獻Y,DominissiniD,RechaviG,HeC:Geneexpressionregulationmediatedthroughreversiblem(6)(5):(1):(12):(6):(1):(1):(uridine)(41):(6)(7540):(1):(7481):(4):(6)A-LAIC-seqrevealsthecensusandcomplexityofthem(6)(8):UTRm(6)(4):(7544):(6)(6):(5):(7667):(2):"">panstyle="color:#f5c81c;">xiainducesthebreastcancerstemcellphenotypebyHIF-dependentandALKBH5-mediatedm(6)(14):"">panstyle="color:#f5c81c;">(40):(6)(3):(1):(1):(4):(11):。上海小鼠科研技術服務培養