我們知道WB實驗步驟繁瑣，一次實驗歷時也不短，從提蛋白到顯影結束可能要三天，我們就講一下這里面的一些關鍵環節。一、蛋白提取及變性1、提取蛋白很多經驗豐富的WB實驗者都深有體會，蛋白提取是影響結重要的環節之一。該過程重要的是防降解和保證蛋白濃度不要太低。防降解主要有兩點，一是裂解前注意保持樣品處于低溫環境中，二是裂解時加入足夠的蛋白酶抑制劑。我們習慣先用冰冷的PBS做心臟的體循環灌注，然后冰上取腦，分離各腦區(嗅球，皮層，海馬，中腦，小腦，延髓，丘腦，紋狀體)后置于，用液氮速凍后轉移至-80度冰箱長期保存。接著是保證蛋白濃度，即要加入適量的裂解液，加太少會使蛋白提取不充分，加太多會讓蛋白濃度太低，一般經驗是這樣的，細胞樣品例如一個六孔板的細胞加60微升的裂解液，動物組織的話每毫克組織加10微升裂解液。還要加上超聲破碎處理，具體方案見討論部分。如果沒有超聲破碎儀，那就用1毫升注射器不斷抽吸，冰上反復抽吸1分鐘左右，注意不要產生過多氣泡。(需要灌注取材的視頻可以私聊獲取，由于文件過大，又比較血腥，不宜直接放到文章里。)2、蛋白變性加入上樣緩沖液后100攝氏度煮10分鐘，這里的上樣緩沖液有兩種可選。了解更多關于動物模型的問題歡迎來電咨詢，如您需要，竭誠為您服務。兔科研技術服務實驗室

外泌體的抑制作用外泌體水平升高通常與不同類型的惡化相關，一些研究人員希望能通過降低外泌體到正常水平來防止不良預后。從這個角度出發，許多正在進行的研究旨在通過調節外泌體生成分泌的過程或通過特異性靶向其成分抑制其與靶細胞的相互作用來調節外泌體的產生。如今我們對外泌體機制和不同生理和病理條件下的功能的理解呈指數級增長，雖然目前其生物學功能還未完全解析清楚，但研究者們在許多領域均已對其進行了深入探索。外泌體不是廢物顆粒，而是細胞間通訊的關鍵介質，作為宿主細胞的衛星，外泌體包含大量的生物信息，其功能超出了初的預期，宿主細胞控制著外泌體的內容物，從而改變了自己或其他細胞的命運。其次，外泌體對的進展和轉移有著強烈的影響，可以通過外泌體預測轉移的部位并建立轉移前的生態位。參考文獻：[1]高方園,焦豐龍,張養軍,秦偉捷,錢小紅.外泌體分離技術及其臨床應用研究進展[J].色譜,2019,37。云南兔科研技術服務技術上海研錄生物醫藥為您提供一站式科研技術服務。

如果實驗平臺的儀器需要提前預約，建議提前規劃好使用的時間。反復總結尋找答案在整個預實驗的過程中可能會出現很多問題。比如造模效果欠佳、灌胃操作不當、腹腔注射操作失誤、使用不當等引起動物死亡。每遇到問題都需要自己想辦法解決，可以從導師、師兄師姐、文獻、貼吧、視頻教程等找到答案。比如筆者曾遇到同樣的給，發現有的大鼠得很深，有的大鼠還活蹦亂跳，在反復嘗試調整濃度，給劑量，更換方式，后來才發現是動物體重秤的準度有問題，導致體重秤得不準。因此，需要自己反復琢磨到底是實驗過程中哪一個環節出現問題，逐一排除。也要求在每一個實驗步驟需要標準化，統一化，盡可能的排除干擾因素，這樣方便在遇到問題快的找到答案。同時，建議每日總結，大到動物死亡原因分析，小到灌胃操作耗時多長時間。建議反復總結出每天實驗的優缺點。做任何一個操作之前，建議提前腦海中反復模擬，準備好相關工具和試劑，避免臨用之際缺少的，影響實驗操作節奏和個人心情。筆者曾經灌胃操作的時候發現竟然忘帶了，只好重新回實驗室準備，那真叫一個郁悶。仔細記錄每日實驗過程無論是碩士還是博士，導師給我們上的堂課往往就是交代我們要詳細記好實驗記錄，只要是和實驗相關的。

二甲苯Ⅰ、Ⅱ各15min至透明。（2）放入二甲苯和石蠟等量混合液處理15min，再放入石蠟Ⅰ、Ⅱ透蠟各50~60min。透蠟在恒溫箱內進行，箱內溫度保持在55~60℃左右。4、包埋（1）用鑷子夾取蠟模在酒精燈上稍加熱，并倒入少許從溫箱中取出的純石蠟。（2）再將鑷子在酒精燈上稍加熱，夾取材料將切面朝下放入蠟模中，排列整齊，再放上包埋盒，輕輕倒入熔蠟。5、切片、展片、貼片（1）將包埋好的石蠟塊固定在切片機上，調整厚度調節器到所需的切片厚度，一般為4~6μm。（2）切下的組織薄片要放到加熱的水中燙平，再貼到載玻片上，放45℃恒溫箱中烘干。二、HE染色1、脫蠟、復水（1）保持水浴鍋溫度為60℃，將切片放入干燥的染色缸內，放入水浴鍋中，30min至蠟熔化。（2）石蠟切片經二甲苯Ⅰ、Ⅱ脫蠟各5min，然后放入100%、95%、90%、80%、70%各級酒精溶液中各3~5min，再放入蒸餾水中3min，以便染料可以進入組織。2、染色、脫水（1）切片放入蘇木精中染色約10~30min，用流水沖洗約15min，使切片顏色變藍。（2）將切片放入1%鹽酸乙醇液中褪色，幾秒后見切片變紅、顏色較淺即可，后將切片再放入流水中使其恢復藍色。（3）切片放入50%、70%、80%乙醇中各3~5min。干貨分享 | TUNEL法檢測細胞凋亡原理和經驗.

如胰腺，一般取胰島較多的胰腺尾部；肺應取有細支氣管及帶有軟骨片的小支氣管部。如果實驗需進行多樣本的采集，采集順序應按照：消化，神經系統，皮膚，肌肉等的順序進行。選好塊的切面。熟悉某些成分安排，然后決定其切面的走向；如一長管狀以橫切面較好。切除不需要的部分。特別是周圍的脂肪等，應盡可能掉，否則給固定、脫水、浸蠟、切片等帶來一些不必要的問題。樣品的固定（1）固定的方法：①小塊固定法：從動物取下的小塊，立即置入液態固定劑（這是應用經常的方法）。②注射/灌注固定法：某些塊由于體積過大或固定液極難滲入內部或需要對整個臟器或整個動物進行固定，這時宜采用注射固定法，將固定液注入血管，經血管分支到達整個和全身，從而得到充分的固定。另，空腔比如肺，肺內含有空氣，固定液難以滲入，建議先做肺灌注，使得肺充盈滿固定液以后再進行保存，如果空腔中氣體沒有排出，后續可能影響固定效果（沒有灌注的肺會浮在液體表面不利于固定，切片以后也會看到很多的空泡）。③蒸汽固定法：比較細小而薄的標本，可用鋨酸或甲醛蒸汽固定。主要用于血液或細胞涂片以及某些薄膜的固定。。慢病毒載體包含了包裝、轉染、穩定整合所需要的遺傳信息。浙江組織科研技術服務實驗

外泌體在生物醫學方面有哪些應用。兔科研技術服務實驗室

把膜先用TBST泡洗兩遍再用5%脫脂奶粉或者BSA室溫封閉1-2小時。注意一定要讓蛋白面充分接觸封閉液。2、孵一抗脫脂奶粉封閉的話，要用TBST泡洗三遍再轉移至一抗溶液中，BSA封閉的可以直接轉移至一抗中。如果膜的寬(膜是一個長方形，這里的寬與長相對應)不大于8毫米，我習慣置于15毫升離心管中孵育，兩條膜"背對背"式放置于一個管子里(3毫升液體即可)。如果大于8毫米，就用普通的5格的一抗孵育盒(4毫升即可)。4度過夜，一般是12-18個小時，注意放置水平，用搖床。內參等蛋白豐度很高的如果孵久了可能出現條帶連在一起的情況，這時可以縮短孵育時間或者降低一抗的濃度。六、孵二抗顯影1、孵二抗室溫一個小時足矣。這步要注意的是建議用5%BSA或者脫脂奶粉稀釋二抗，這樣背景會干凈許多。也要注意膜的蛋白面要充分接觸二抗溶液，我們一般一條膜一個槽地孵。2、顯影這一步有個細節可能有些同學沒注意到，就是ECL發光液要與HRP反應一分鐘后顯影效果才會更好，還有要注意的是顯影液要均勻覆蓋，一般第二次顯影(加新的顯影液)比一次好看。兔科研技術服務實驗室