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來源: 發布時間:2024-03-11

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用伊紅乙醇液對比染色1~3min。(4)將切片放入95%乙醇中洗去多余的紅色,然后放入無水乙醇中3~5min,吸干后將切片放入二甲苯Ⅰ、Ⅱ中各3~5min。3、觀察在鏡下可見卵巢呈扁橢圓形,表面為單層扁平上皮細胞或單層立方上皮,卵巢實質分為皮質和髓質。可見上皮,原始卵泡和生長卵泡。卵巢組織中各發育階段卵泡及卵巢基質的形態結構清晰可見,細胞核呈藍紫色,細胞質及間質成分呈淺紅色,卵泡中卵母細胞、卵泡細胞、透明帶均清晰可見。注意事項1.取材注意事項(1)取材動作要迅速,不宜作太久的拖延以免組織細胞的成分、結構等發生變化。(2)切片材料應根據需要觀察的部位進行選擇,盡可能不要損傷所需要的部分。(3)切取的組織塊不宜太大,以利于固定劑穿透,通常以5mmx5mmx2mm或10mmx10mmx2mm為宜。2.固定注意事項(1)一般固定液,都以新配為好,配好后應貯存在陰涼處,不宜放在日光下,以免引起化學變化,失去固定作用。(2)有些混合固定液的成份之間會發生氧化還原作用,一定要在使用前才混合,如果混合太早,固定時就沒有作用了。(3)固定材料時,固定液必須充足,一般為材料塊的20~30倍,有些水分多的材料,中間應更換1~2次新液。(4)材料固定完畢后。浙江血液科研技術服務技術動物模型的表現與人類疾病可能存在差異,因此需要謹慎使用。

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代謝組學的研究對象大都是相對分子量在1000以內的小分子物質,因此常用的血液樣本在取樣后,應小心操作,防止溶血,盡快分離出血清,分置于溫環境下保存。由于用于理實驗的動物采集相對其他樣品的采集,操作更繁瑣,在處理過程中許多細節容易忽略,造成數據不完美(甚至不能用)。因此接下來將重點介紹樣品采集的注意事項及其固定。樣品采集注意事項應新鮮,操作時間盡可能短,否則細胞發生死后變化、自融及現象。是動物心臟還在跳動時采集,樣本取出后在5分鐘以內置于固定液內,避免長時間暴露在空氣環境中。塊盡量小而薄。塊的厚度以不超過5mm為宜,較為理想的厚度為2mm左右,主要目的是使固定液迅速而均勻的滲入塊內部。勿使塊受擠壓。在采集過程中,應盡量選擇較為鋒利的手術,如手術刀片等,避免操作過程中擠壓挫傷標本。擠壓過的均不可用。固定液的量一般以塊大小的20倍為宜,能夠在容器內自由移動。盡量保持的原有形態。新鮮經固定后,或多或少產生收縮現象(如胃腸),為此可將展平,以盡可能維持原形。保持清潔。塊上如有血液、污物、粘液、食物、糞便等,可用生理鹽水沖洗,然后再入固定液,但要注意防止損傷。要熟悉采集部位。要能準確的按解剖部位采集。

一種是用beta巰基乙醇打開蛋白質分子二硫鍵的,另一種是用DTT(二硫蘇糖醇)。兩者的作用是一樣的,但特點不一樣,前者更容易與氧氣反應,穩定性比后者差,如果在常溫下暴露在空中,前者只能維持24小時的活性,后者卻可以維持7天左右。所以該如何選擇?如果是蛋白樣品較少,跑幾次就可以用完的樣品,這時選擇beta巰基乙醇。如果樣品很多,計劃跑上幾十次的,優先選擇DTT,建議變性后分裝保存。二、SDS-PAGE凝膠配制1、配膠前準備首先強調一下,一塊好的膠是跑好蛋白的前提,所以這個環節也不容忽視。玻璃板的選擇,一種是1毫米厚度的,另一種是,這個厚度選擇也是有講究的,如果上樣體積小于10微升,優先選1毫米,否則選。原因是什么?答案在轉膜部分揭曉。還有分離膠的濃度也要選擇適合的。然后玻璃板和梳子要洗干凈,晾干。裝板,注意厚板和薄板的底部要對齊,否則會漏膠。加制膠的各成分前,要觀察液體是否有沉淀,有沉淀的盡量不要用。2、制膠按配方說明依次加入各組分,加完SDS后先簡單手動搖勻幾下,然后迅速加入過硫酸銨和TEMED,搖勻,緊接著就灌膠。然后我習慣用95%的酒精壓膠,我也用過純水,感覺純水壓沒那么好,由于水的密度較大,會把分界處的膠壓得膨大。在藥物研發過程中,科研人員可以通過對動物模型進行藥物處理,觀察其療效和副作用,為新藥的試驗提供依據。

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