動物模型在科研中有著普遍的應用。首先，它們可以幫助科研人員深入理解的共同性，即不同物種之間存在的共有理變化過程。通過對動物模型的研究，科研人員可以更清楚地了解的發展過程和機制，為人類的檢查提供理論依據。其次，動物模型還為新研發和苗測試提供了的平臺。在研發過程中，科研人員可以通過對動物模型進行處理，觀察其和副作用，為新的臨床試驗提供依據。而在苗測試中，動物模型則可以用來評估苗的性和安全性。此外，動物模型還為科研人員提供了研究人類的跨學科方法。例如，通過比較人類和動物模型的基因組學、蛋白質組學等數據，可以發現與發生相關的關鍵基因和蛋白質，從而為的和檢查提供新的思路。雖然動物模型在科研中發揮了巨大的作用，但也存在一些挑戰。首先，由于物種差異的存在，動物模型的表現與人類可能存在差異，因此需要謹慎使用。此外，動物模型的倫理問題也不容忽視，科研人員需要在符合倫理規定的前提下進行相關研究。盡管存在挑戰，動物模型的發展前景仍然值得期待。隨著科技的不斷進步，科研人員將能夠開發出更為精確、實用的動物模型。干貨分享 | PCR反應污染原因追蹤及污染處理方法。疾病模型科研技術服務外包

    制作該模型的方法為大鼠腹腔麻醉消毒后選取腹部正中切口打開腹腔長約2cm，尋找盲腸，小心分離其遠端與大腸的系膜，在盲腸遠端1/2處用無菌4號絲線緊緊結扎，并用無菌7號針頭在已結扎盲腸遠端處貫通穿刺，然后把盲腸推回腹腔，關閉腹腔。影響因素多數研究一致認為盲腸結扎位置是CLP模型中死亡率和疾病嚴重程度的主要決定因素。結論為：①結扎25%或以下的盲腸死亡率幾乎為零，為輕度膿毒癥；②結扎50%～60%的盲腸導致術后死亡率為60%，為中度膿毒癥；③結扎75%或以上的盲腸導致小鼠在術后2～3d內全部死亡，為重度膿毒癥。而在不同程度膿毒癥中，死亡主要集中在初的48h內。有研究通過改變盲腸結扎位置和穿刺針直徑來調節膿毒癥的嚴重程度，其中提到與結扎長度小于1cm的小鼠相比，結扎長度超過1cm的小鼠死亡率增加至100%；增加穿刺針的直徑也使得存活率從100%（22G針）降低至55%（19G針）。結論為：在上述兩個因素中，盲腸結扎位置比針頭大小影響更為。CLP誘導的膿毒癥術后6h即可出現菌血癥，術后約12h出現膿毒癥相關臨床癥狀，包括發熱、寒戰、毛發豎立、全身無力和活動減少等，術后18h開始死亡。總之，在制作CLP模型時。湖北血液科研技術服務分離干貨分享 | 避坑，微生物培養的污染因素及預防方法，少走彎路。

    METTL3能夠促進肺腺細胞的生長、生存和侵襲，但還不清楚它是否作為m6A調節器或效應器發揮作用[25]。在急性髓細胞白血病（AML）患者中，m(6)A調控基因的突變或拷貝數變化與TP53突變存在密切聯系，且m(6)A調控基因的改變與AML不良預相關[26]。此外，FTO在AML中高表達，它通過降低mRNA轉錄本中的m(6)水平，調節ASB2和RARA等靶點的表達，增強了白血病基因介導的細胞轉化和白血病形成，并抑制全反式維甲酸(ATRA)誘導的AML細胞分化[27]。在脂肪形成過程中，FTO表達與m6A水平成負相關，促進脂肪形成[3]。在膠質細胞瘤樣細胞中，ALKBH5通過lncRNAFOXM1介導FOXM1基因pre-mRNA上的m6A修飾維持膠質瘤細胞的成瘤性[28]。此外，甲基轉移酶METTL3或METTL14的敲除，能夠改變m6A的富集和ADAM19的表達，極大地促進了膠質瘤細胞的生長、自我更新和形成[29]。圖2m6ARNA修飾和介導的功能[30]m6A的研究方向主要是通過研究m6A修飾相關的甲基化、去甲基化酶和識別蛋白的功能，進而研究m6A修飾的生物學功能和作用機制：一般通過敲除m6A酶分子，研究下游功能基因分子的表達和m6A甲基化情況，通過介導相關基因異常（可變剪切、穩定性、翻譯、miRNA調控）影響細胞表型和功能特征。

    是整體甲基化進程所必須的[2]。FTO是ALKB家族的成員，作為個被發現的去甲基酶，可影響剪切因子SRSF2的RNA結合能力，進而調控pre-mRNA的剪切加工過程[3]。目前已發現FTO調節異常與肥胖、大腦畸形和生長遲緩相關，揭示m6A可能對這些疾病具有重要的調節功能[4-6]。ALKBH5是ALKB家族中被發現具有去甲基作用的另一個成員，以RNaseA敏感的方式與核小斑共定位，它可直接催化m6A-甲基化腺苷去除甲基而不同于FTO的氧化去甲基化[7].此外，ALKBH5和它的去甲基化活性影響新生mRNA合的成和剪切效率[7]，且ALKBH5敲除雄性小鼠表現出精子發生異常，這可能是精子發生相關基因表達改變的結果[7]。m6AmRNA修飾執行其功能主要通過兩個途徑：精細調控甲基化轉錄本的結構，以阻止或誘使蛋白-RNA相互作用；或被直接由m6A結合蛋白識別，誘發續反應。目前一類含有YTH功能結構域的蛋白被鑒定為m6A修飾的結合蛋白。其中YTHDF1,YTHDF2,YTHDF3，YTHDC1和YTHDC2己被證實是ｍ６Ａ的結合蛋白.YTHDF1主要影響ｍ６Ａ修飾基因的翻譯，YTHDF2主要影響ｍ６Ａ修飾基因的降解，而YTHDC1結合ｍ６Ａ修飾的基因影響其剪接。HNRNPC是一種豐富的核RNA結合蛋白，參與pre-mRNA的加工[8]。細胞轉染又分為瞬時轉染和穩定轉染，瞬時轉染是指外源基因進入受體細胞后.

    且研究表明HNRNPC通過m6A與RNA結合調控目標轉錄本的豐度和選擇性剪切[9].圖1m6A修飾的酶系統[10]m6A生物學功能越來越多的證據表明m6A修飾在哺乳動物中發揮重要的生物功能。例如，在轉錄水平上調控RNA的穩定性[11]、定位[12]、運輸、剪切[13]和翻譯[14]。ClaudioR.等發現依賴METTL3的pri-miRNA甲基化，會促進DGCR8識別和加工，從而促進microRNA的成熟[15]。此外，m6A識別蛋白HNRNPA2B1促進pri-miRNA加工成pre-miRNA[16]。另外，環狀RNA上m6A的修飾能促進環狀RNA的翻譯[17]。m6A修飾在基因表達調控中起著重要的作用，其調控機制的異常可能與人類疾病或相關。目前發現m6A可能會影響精子發育（ALKBH5，METTL3，Ythdc2）、發育（METTL3、FTO、ALKBH5）、免疫（METTL3）、UV誘導的DNA損傷反應（METTL3，FTO）、生成（YTHDF2）或轉移（METTL14）、干細胞更新（METTL14）、脂肪分化（FTO）、生物節律、細胞發育分化、細胞分裂及其它的一些生命過程。例如，ALKBH5敲除的雄性小鼠增加了mRNA中的m(6)A修飾，其特點是凋亡影響減數分裂中期的精子細胞，引起生育能力受損[7]。METTL3和METTL14增加弱精癥精子的m6A水平[18]，在生殖細胞中，METTL3的敲除嚴重抑制精子分化和減數分裂的發生。隨著科技的不斷進步，科研人員將能夠開發出更為精確、實用的動物模型，更好地為人類健康保駕護航。疾病模型科研技術服務外包

常用實驗動物模型按產生原因分為以下5類：自發性動物模型、誘發型模型、遺傳工程模型、醫學模型陰性模型。疾病模型科研技術服務外包

    原理以慢病毒包裝為例，主要包括3個質粒：質粒DNA可以轉錄出慢病毒遺傳物質(RNA)，但不能翻譯出慢病毒的外殼及蛋白成分的載體質粒，其同時含有目的基因和報告基因，psPAX2是可以表達慢病毒外殼的質粒，其表達產物可通過粘附機制更易穿過細胞膜。為慢病毒的膜蛋白質粒，通過脂質體進行三質粒共轉到靶細胞基因組中，宿主基因組在表達時，隨宿主基因轉錄出的目的基因RNA與psPAX2、基因翻譯出的蛋白組裝為慢病毒。病毒進入細胞后，其遺傳物質RNA逆轉錄出DNA，該基因再整合到靶細胞的基因組中，完成轉染過程。因為質粒DNA只能轉錄出病毒RNA和表達目的基因卻不能表達出病毒的外殼和膜蛋白成分，因此其不能像普通的病毒一樣在宿主細胞能反復增殖，故對宿主細胞是無害的并且高效的將目的基因轉染到靶細胞基因組中。用途病毒產生，包裝病毒。材料與儀器無菌1×PBS，對數期293T細胞，細胞計數器，病毒質粒(以慢病毒為例：psPAX2/)，轉染試劑(lipMax或者lipo3000)，Polybrene、病毒濃縮液(生物公司有售)等。步驟(1)293T細胞鋪板取對數生長期的293T細胞，用的胰蛋白酶消化293T細胞，計數。若是10cm大皿，建議按照10-12×106每皿的數量將293T細胞均勻鋪入。若是6孔板。疾病模型科研技術服務外包