充分去除組織表面的血漬和其它異物。2、將組織轉入另一無菌的培養皿，切去多余組織如脂肪或壞死組織，用無菌刀將組織切成1mm3小塊。3、用無菌彎頭鑷將組織塊轉入50ml的無菌離心管中，讓組織塊沉淀，吸去多余液體，加入10mlbuffera，充分混勻，300g離心5分鐘，棄上清，如此重復操作3次。4、用10mlbufferb重懸組織塊，將組織塊懸液轉移至25cm2無菌培養瓶中，放置co2培養箱中，37℃培養24小時。5用強力吹打使組織分散，將懸液移入15ml無菌離心管，500g離心5分鐘，棄上清。6、取10mlbufferc懸浮組織塊，置于37℃水浴中30分鐘，每10分鐘搖動一次，讓組織塊沉淀。7、取上清放入50ml離心管中，加入1mlbufferd,終止反應。8、重復步驟6、7兩次。9、將吸出全部上清進行離心，500g離心5分鐘，棄上清。10、取2mlbuffere懸浮細胞，用血球計數板或電子記數儀計數細胞，并檢測細胞活性。11、懸浮細胞用相應的原代細胞培養基稀釋，使每毫升培養基中含有1×106個細胞，接種培養瓶中，大約每平方厘米2×105個細胞。12、每隔2-4天更換一次培養基（以ph變化為標準），觀察細胞生長情況。細胞操作都需嚴格按照無菌操作進行。湖北原代細胞購買

    如果接種的細胞密度過低，細胞之間的促生長作用很小，也很難使細胞適應從體內的組織環境到被分散后進入生存環境的變化過程。如果接種的細胞密度過大，會導致營養物質供應不足，代謝廢物積累較快需要經常換液和傳代。2）適當增大原代培養接種的細胞密度，給培養的細胞提供更多的類似于在體內時細胞之間的相互作用，會極大提高原代培養的細胞在體外存活率。待細胞適應體外環境后進行傳代培養時再以較低的密度接種和培養。3）盡快使接種的細胞貼壁，是決定培養能否成功的關鍵。可以在接種后先將培養瓶置培養箱內培養3h到5h，待細胞貼壁后，再補足培養液繼續培養。3、懸浮型原代細胞1）必須保持細胞的懸浮狀態。可以通過增加培養液的黏度來幫助細胞呈懸浮狀態，如給培養液中加入低濃度的透明質酸復合物。在有攪拌裝置的培養器皿內加入培養液是，以5ml為限度，否則攪拌時會產生氣泡對細胞造成傷害。使用這種方式需注意勿使攪拌速度過快，否則即可使培養液溢出又容易造成污染。如果培養液的量在5ml以下，可以采用旋轉瓶培養。給懸浮培養的細胞換液時要注意不要吸出細胞。2）能夠進行懸浮培養的細胞，其生命力一般都比較旺盛，體外分裂增殖的速度較快，營養成分消耗大。西藏裸鼠原代細胞外包采用CD29、CD90、CD34、CD45抗體進行流式細胞鑒定，結果顯示：CD29、CD90呈現陽性;CD34、CD45呈現陰性。

    7)蓋好培養瓶的蓋子，輕輕搖晃培養瓶以使細胞分布均勻。若需要氣體交換可打開蓋子。(8)將培養瓶放入培養箱中（37℃，5%CO2，95%空氣）(9)放入培養箱后第6-16小時更換一次培養基，以去除殘留的二甲基亞楓和未貼壁的細胞。5、細胞培養過程中，多久更換一次培養基？這取決于細胞生長的速度。一般而言2-3天更換一次培養基，許多細胞培養實驗室通常在周一，周三，周五更換培養基。注意：凍存細胞復蘇后，在6-16小時內更換培養基，以去除殘留的二甲基亞楓和死亡的細胞。6、我能擴增培養和再次凍存原代正常人類細胞嗎？這取決于細胞的類型。一些細胞類型像神經細胞，神經膠質細胞和一些生長緩慢的上皮細胞，不推薦擴增培養和再次凍存。其它的細胞類型像成纖維細胞、星形細胞、腎系膜細胞、星形膠質細胞等等，可以擴增培養和再次凍存。然而，需要注意的是再次凍存的過程可能導致細胞生長性能的改變。7、培養瓶中應該加入多少體積的培養基？我們推薦的用量為：T-25培養瓶5ml，T-75培養瓶15ml，T-150培養瓶30ml。

    導語對于大部分科研人員來說，研究中一般用到均是現成的細胞系/株，我們只需要：進行細胞傳代和保種。然而，這些細胞系常常由于體外長期培養，而丟失原有生物學特性，對藥物處理的反應差距越來越大。因此，原代細胞的地位日漸凸顯，Paper中若有了原代細胞的數據都會添色不少。然而，就小編親生經歷，原代細胞分離著實是個技術活，我們就結合自身經驗，為大家介紹：組織和正常組織的原代細胞的分離與培養方法。部分：原代細胞的基本知識1.什么是原代細胞培養?原代細胞（Primarycells）：是指直接從機體取出的組織或細胞獲得單個細胞并在體外進行培養的細胞。這里的組織主要指：組織、外周血及胚胎等。原代細胞培養：由于原代細胞生長緩慢，繁殖一定的代數停止生長（一般10代以內）。所以一般認為：培養的原代的第1和傳代到第10代以內的細胞統稱為原代細胞培養。2.原代細胞與細胞系（celllines）的區別原代細胞和細胞系的比較：PrimarycellsCelllines增殖能力較弱強繁殖代數一般只能傳10代以內無限增殖，50代左右遺傳物質完整性遺傳物質未改變遺傳物質發生改變生物特性接近臨床樣本偏離臨床樣本培養容易程度比較復雜簡單。當細胞融合度達到90%以上時，給細胞傳代。

    導語對于大部分科研人員來說，研究中一般用到均是現成的細胞系/株，我們只需要：進行細胞傳代和保種。然而，這些細胞系常常由于體外長期培養，而丟失原有生物學特性，對藥物處理的反應差距越來越大。因此，原代細胞的地位日漸凸顯，Paper中若有了原代細胞的數據都會添色不少。然而，就小編親生經歷，原代細胞分離著實是個技術活，結合自身經驗，為大家介紹：組織和正常組織的原代細胞的分離與培養方法。原代細胞的基本知識1.什么是原代細胞培養?原代細胞（Primarycells）：是指直接從機體取出的組織或細胞獲得單個細胞并在體外進行培養的細胞。這里的組織主要指：組織、外周血及胚胎等。原代細胞培養：由于原代細胞生長緩慢，繁殖一定的代數停止生長（一般10代以內）。所以一般認為：培養的原代的第1和傳代到第10代以內的細胞統稱為原代細胞培養。2.原代細胞與細胞系（celllines）的區別原代細胞和細胞系的比較：PrimarycellsCelllines增殖能力較弱強繁殖代數一般只能傳10代以內無限增殖，50代左右遺傳物質完整性遺傳物質未改變遺傳物質發生改變生物特性接近臨床樣本偏離臨床樣本培養容易程度比較復雜簡單。具有多種原代細胞，包含人源細胞、大鼠細胞、小鼠細胞。湖北血液原代細胞外包

傳代后細胞生長較快，4-6天即可匯合，并保持上述形態學特征和生長特點。湖北原代細胞購買

    易操作原代細胞和細胞系的比較3.原代細胞的應用由于原代細胞生物學特性未發生很大改變，接近和反映體內生長特性，因此是：(1)研究生物體細胞的生長、代謝、繁殖提供有力的工具；(2)更好實現醫診治模式，實現個體化用藥的目的。第二部分：原代細胞分離和培養技術原代培養的原理將動物機體的各種組織從機體中取出，經各種酶(常用胰蛋白酶/膠原酶)、螯合劑(常用EDTA)或機械方法處理，分散成單細胞，置合適的培養基中培養，使細胞得以生存、生長和繁殖，這一過程稱原代培養。主要包括取材——分離——培養等3部分；在原代細胞應用較多的包括：組織（如實體瘤、皮膚等）、懸浮細胞的取材等。下面依次介紹：一、組織的取材病人自體的原代細胞由于更接近臨床患者標本，可以更好實現醫療的診治模式，實現個體化用藥的目的。所以對病人自體細胞體外分離與培養十分必要。基本過程如下圖所示：原代細胞的分離步驟備注：上圖細胞為肉瘤患者的原代細胞具體步驟如下：1.在無菌條件下的冰上對新鮮離體的組織，剔除包膜及壞死組織，無菌PBS清洗3-5次；切成約1mm3組織塊；2.加入2mmol的EDTA，搖勻后放置冰上約30-60min；3.離心，并加入膠原酶消化（含蛋白酶）；4.消化期間，置于37°培養箱。湖北原代細胞購買

上海研錄生物醫藥有限公司是一家有著雄厚實力背景、信譽可靠、勵精圖治、展望未來、有夢想有目標，有組織有體系的公司，堅持于帶領員工在未來的道路上大放光明，攜手共畫藍圖，在上海市等地區的商務服務行業中積累了大批忠誠的客戶粉絲源，也收獲了良好的用戶口碑，為公司的發展奠定的良好的行業基礎，也希望未來公司能成為*****，努力為行業領域的發展奉獻出自己的一份力量，我們相信精益求精的工作態度和不斷的完善創新理念以及自強不息，斗志昂揚的的企業精神將**上海研錄生物醫藥供應和您一起攜手步入輝煌，共創佳績，一直以來，公司貫徹執行科學管理、創新發展、誠實守信的方針，員工精誠努力，協同奮取，以品質、服務來贏得市場，我們一直在路上！